Potencial de bioestimulante na mitigação de danos de herbicidas aplicados em pós-emergência na cultura da soja

Autores

DOI:

https://doi.org/10.5433/1679-0359.2024v45n6p1975

Palavras-chave:

Ascophyllum nodsosum, Glycine max, Cloransulam, Extrato de algas, Fotossíntese, Lactofen.

Resumo

Uma alternativa para minimizar os efeitos da indução de resistência aos herbicidas é a rotação de ingredientes ativos. Entre os herbicidas amplamente utilizados, destacam-se os inibidores das enzimas acetolactato sintase (ALS) e da protoporfirinogênio oxidase (PROTOX). No entanto, a utilização destes pode causar uma série de danos ao metabolismo fotossintético da soja e comprometer o desenvolvimento da cultura, tendo como alternativa para mitigar os efeitos a aplicação de bioestimulante derivado da alga Ascophyllum nodsosum. Portanto, objetivou-se com o presente estudo verificar o potencial de um bioestimulante derivado de A. nodosum em mitigar danos ao processo fotossintético de plantas de soja tratadas com herbicidas em casa de vegetação e pós-emergência. Para isto, foi instalado um experimento em casa de vegetação com nove tratamentos, em arranjo fatorial com 3 aplicações de herbicidas (sem herbicida; Cloransulan; Lactofen) X 3 aplicações de biostimulante (sem aplicação; 3 dias após a aplicação dos herbicidas (DAA); 6 DAA). Foram realizadas avaliações de trocas gasosas, índices de clorofilas e fluorescência da clorofila a. Por meio dos resultados obtidos foi possível concluir que aos 2 dias após a aplicação dos bioestimulantes, os herbicidas não proporcionaram inibição das trocas gasosas das plantas de soja. Por outro lado, aos 10 DAA dos herbicidas foi possível constatar que o cloransulam e lactofen alterou os parâmetros da fluorescência da clorofila a, porém não foi constatado efeito protetor do bioestimulante. Embora não tenha efeito isolado do bioestimulante nos parâmetros da fluorescência, sua aplicação aos 3 DAA dos herbicidas proporcionou incrementos na taxa fotossintética, condutância estomática e na eficiência da carboxilação das plantas de soja. É possível concluir que o bioestimulante tem potencial de uso na cultura da soja com o propósito de mitigar os efeitos da aplicação de herbicidas seletivos.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Biografia do Autor

Christiano Lima Lobo de Andrade, Instituto Federal Goiano

Dr. em Ciências Agrárias - Agronomia, Departamento de Tecnologia de Aplicação, Pulveriza Soluções Agrícolas, Pulveriza, Rio Verde, GO, Brasil.

Alessandro Guerra da Silva, Universidade de Rio Verde

Dr. em Fitotecnia, Departamento de Fitotecnia, Universidade do Rio Verde, UniRV, Rio Verde, GO, Brasil.

Alan Carlos da Costa, Insituto Federal Goiano

Dr. em Ciências Agrárias, Departamento de Fisiologia Vegetal, Insituto Federal Goiano, IF Goiano, Rio Verde, GO, Brasil.

Marconi Batista Teixeira, Instituto Federal Goiano

Dr. em Agronomia, Departamento de Hidráulica e Irrigação, IF Goiano, Rio Verde, GO, Brasil.

Adinan Alves da Silva, Instituto Federal Goiano

Dr. em Ciências Agrárias, Departamento de Fisiologia Vegetal, Instituto Federal Goiano, IF Goiano, Rio Verde, GO, Brasil.

Wilker Alves Morais, Instituto Federal Goiano

Dr. em Ciências Agrárias, Agronomia, Departamento de Hidráulica e Irrigação, IF Goiano, Rio Verde, GO, Brasil.

Guilherme Braga Pereira Braz, Universidade de Rio Verde

Dr.  em Agronomia, Departamento de Ciência de Plantas Daninhas, Cooperativa Agroindustrial de Produtores Rurais do Sudoeste Goiano, COMIGO, Rio Verde, GO, Brasil.

Fernando Rodrigues Cabral Filho, Instituto Federal Goiano

Dr. em Ciências Agrárias, Agronomia, Departamento de Hidráulica e Irrigação, UniRV, Rio Verde, GO, Brasil.

Frederico Antonio Loureiro Soares, Instituto Federal Goiano

Dr. em Engenharia Agronômica, Departamento de Hidráulica e Irrigação, IF Goiano, Rio Verde, GO, Brasil.

Referências

Anli, M., Kaoua, M. E., Boutasknit, A., ben-Laouane, R., Toubali, S., Baslam, M., Lyamlouli, K., Hafidi, M., & Meddich, A. (2020). Seaweed extract application and arbuscular mycorrhizal fungal inoculation: a tool for promoting growth and development of date palm (Phoenix dactylifera L.) cv «Boufgous». South African Journal of Botany, 132(1), 15-21. doi: 10.1016/j.sajb.2020.04.004

Beckie, H. J. (2011). Herbicide‐resistant weed management: focus on glyphosate. Pest Management Science, 67(9), 1037-1048. doi: 10.1002/ps.2195

Bontempo, A. F., Alves, F. M., Carneiro, G. D. O. P., Machado, L. G., Silva, L. O. D., & Aquino, L. A. (2016). Influência de bioestimulantes e nutrientes na emergência e no crescimento inicial de feijão, soja e milho. Revista Brasileira de Milho e Sorgo, 15(1), 86-93. doi: 10.18512/1980-6477/rbms.v15n1p86-93.

Buchanan, B. B., Gruissem, W., & Jones, R. L. (Eds.). (2015). Biochemistry and molecular biology of plants. John Wiley & Sons.

Calvo, P., Nelson, L., & Kloepper, J. W. (2014). Agricultural uses of plant biostimulants. Plant and Soil, 383(1), 3-41. doi: 10.1007/s11104-014-2131-8

Carretero, D. M. (2008). Efeitos da inibição da protoporfirinogênio IX oxidase sobre as trocas gasosas e fluorescência da clorofila em plantas de soja (Glycine max L. Merrill). Dissertação de mestrado, Universidade Federal de Viçosa, Viçosa, MG, Brasil.

Cavalcante, W. S. da S., Silva, N. F. da, Teixeira, M. B., Cabral, F. R., Fº., Nascimento, P. E. R., & Corrêa, F. R. (2020). Eficiência dos bioestimulantes no manejo do déficit hídrico na cultura da soja. Irriga, 25(4), 754-763. doi: 10.15809/irriga.2020v25n4p754-763

Chen, S., Yang, J., Zhang, M., Strasser, R. J., & Qiang, S. (2016). Classification and characteristics of heat tolerance in Ageratina adenophora populations using fast chlorophyll a fluorescence rise OJIP. Environmental and Experimental Botany, 122(1), 126-140. doi: 10.1016/j.envexpbot.2015.09.011

Chittora, D., Meena, M., Barupal, T., Swapnil, P., & Sharma, K. (2020). Cyanobacteria as a source of biofertilizers for sustainable agriculture. Biochemistry and Biophysics Reports, 22(1), 100737. doi: 10.1016/j.bbrep.2020.100737

Choudhury, F. K., Rivero, R. M., Blumwald, E., & Mittler, R. (2017). Reactive oxygen species, abiotic stress and stress combination. The Plant Journal, 90(5), 856-867. doi: 10.1111/tpj.13299

Christoffoleti, P. J., & Nicolai, M. (2016). Aspectos de resistência de plantas daninhas a herbicidas. Dissertação de mestrado, Universidade de São Paulo, Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Piracicaba, SP, Brasil.

Coelho, A. F., Corrêa, B. O., Freitas Pires, F. de, & Pereira, S. R. (2019). Avaliação da aplicação foliar de biofertilizante em quatro cultivares de soja. Ensaios e Ciência C Biológicas Agrárias e da Saúde, 23(1), 2-6. doi: 10.17921/1415-6938.2019v23n1p2-6

Craigie, J. S. (2011). Seaweed extract stimuli in plant science and agriculture. Journal of Applied Phycology, 23(3), 371-393. doi: 10.1007/s10811-010-9560-4

Datta, A., Ullah, H., Tursun, N., Pornprom, T., Knezevic, S. Z., & Chauhan, B. S. (2017). Managing weeds using crop competition in soybean [Glycine max (L.) Merr.]. Crop Protection, 95(1), 60-68. doi: 10. 1016/j.cropro.2016.09.005

Dong, S., Wang, W., Jiang, Y., Ma, Z., Yan, C., Liu, L., & Cui, G. (2019). Antioxidant and proteomic analysis of soybean response to drought during soybean flowering. Ekoloji, 28(107), 2041-2052.

Dourado, D., Neto, Dario, G. J. A., Barbieri, A. P. P., & Martin, T. N. (2014). Ação de bioestimulante no desempenho agronômico de milho e feijão. Bioscience Journal, 30(1), 371-379.

Du Jardin, P. (2015). Plant biostimulants: definition, concept, main categories and regulation. Scientia Horticulturae, 196(1), 3-14. doi: 10.1016/j.scienta.2015.09.021

El-Katony, T. M., Nour El-Dein, M. M., El-Fallal, A. A., Ibrahim, N. G., & Mousa, M. M. (2020). Substrate–fungus interaction on the enzymatic and non-enzymatic antioxidant activities of solid state fermentation system. Bioresources and Bioprocessing, 7(1), 1-11. doi: 10.1186/s40643-020-00316-8

El-Samad, E. H. A., Glala, A. A., El Baset, A. A., & Nadia, M. O. (2019). Improving the establishment, growth and yield of tomato seedlings transplanted during summer season by using natural plant growth bio-stimulants. Middle East Journal of Agriculture Research, 8(1), 311-329.

Eullaffroy, P., Frankart, C., Aziz, A., Couderchet, M., & Blaise, C. (2009). Energy fluxes and driving forces for photosynthesis in Lemna minor exposed to herbicides. Aquatic Botany, 90(2), 172-178. doi: 10.1016/j.aquabot.2008.09.002.

Ferreira, D. F. (2011). Sisvar: a computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, 35(6), 1039-1042. doi: 10.1590/S1413-70542011000600001

Fraga, D. S., Agostinetto, D., Langaro, A. C., Oliveira, C., Ulguim, A. R., & Silva, J. D. G. (2019). Morphological and metabolic changes in soybean plants cultivated in irrigated rice rotation and as affected by imazapyr and imazapic herbicides carryover. Planta Daninha, 37(1), 1-10. doi: 10.1590/S0100-83582019370100023

Garcia, V. V., Silva, M. A. de A. e, & Dalazen, G. (2024). Efeito da palha e da precipitação pluviométrica no controle de Amaranthus hybridus com Imazetapir + Flumioxazina. Semina: Ciências Agrárias, 45(5), 1579-1592. doi: 10.5433/1679-0359.2024v45n5p1579

Guan, X., Chen, X., Qiu, C., Qian, Y., Chen, J., Shao, C., Xie, J., Deng, G., & Peng, C. (2020). Effects of long-term herbicide application on the crops in soybean-peanut rotations in the red soil upland of Southern China. Field Crops Research, 248(1), 107723, 1-9. doi: 10.1016/j.fcr.2020.107723.

Hasanuzzaman, M., Parvin, K., Bardhan, K., Nahar, K., Anee, T. I., Masud, A. A. C., & Fotopoulos, V. (2021). Biostimulants for the regulation of reactive oxygen species metabolism in plants under abiotic stress. Cells, 10(10) 2537, 1-29. doi: 10.3390/cells10102537

Joshi-Paneri, J., Chamberland, G., & Donnelly, D. (2020). Effects of Chelidonium majus and Ascophyllum nodosum extracts on growth and photosynthesis of soybean. Acta Agrobotanica, 73(1), 1-6. doi: 10.5586/aa.7313

Karpstein, C. L., Jr., & Waureck, A. (2020). Associação do uso de bioestimulante e lactofen nas características e na produtividade da cultura da soja. Revista Scientia Rural, 1(1), 1-9.

Krenchinski, F. H., Castro, E. B. de, Cesto, V. J. S., Belapart, D., Rodrigues, D. M., Carbonari, C. A., & Velini, E. D. (2019). Naphthalic anhydride increases tolerance of common bean to herbicides. Journal of Plant Protection Research, 59(3), 383-391. doi: 10.24425/jppr.2019.129754

Kulkarni, M. G., Rengasamy, K. R., Pendota, S. C., Gruz, J., Plačková, L., Novák, O., Doležal, K., & Van Staden, J. (2019). Bioactive molecules derived from smoke and seaweed Ecklonia maxima showing phytohormone-like activity in Spinacia oleracea L. New Biotechnology, 48(1), 83-89. doi: 10.1016/j.nbt.2018.08.004

Lamego, F. P., Ruchel, Q., Kaspary, T. E., Gallon, M., Basso, C. J., & Santi, A. L. (2013). Habilidade competitiva de cultivares de trigo com plantas daninhas. Planta Daninha, 31(3), 521-531. doi: 10.1590/S0100-83582013000300004

Machado, E. C., Schmidt, P. T., Medina, C. L., & Ribeiro, R. V. (2005). Respostas da fotossíntese de três espécies de citros a fatores ambientais. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 40(1), 1161-1170. doi: 10.1590/S0100-204X2005001200002

Mącik, M., Gryta, A., & Frąc, M. (2020). Biofertilizers in agriculture: an overview on concepts, strategies and effects on soil microorganisms. Advances in Agronomy, 162(1), 31-87. doi: 10.1016/bs.agron.2020.02.001

Mahmoud, S. H., Salama, D. M., El-Tanahy, A. M., & El-Samad, E. H. A. (2019). Utilization of seaweed (Sargassum vulgare) extract to enhance growth, yield and nutritional quality of red radish plants. Annals of Agricultural Sciences, 64(2), 167-175. doi: 10.1016/j.aoas.2019.11.002

Mansoor, S., Ali Wani, O., Lone, J. K., Manhas, S., Kour, N., Alam, P., Ahmad, A., & Ahmad, P. (2022). Reactive oxygen species in plants: from source to sink. Antioxidants, 11(2), 225, 1-14. doi: 10.3390/antiox11020225

Maxwell, K., & Johnson, G. N. (2000). Chlorophyll fluorescence - a practical guide. Journal of Experimental Botany, 51(345), 659-668. doi: 10.1093/jexbot/51.345.659

Merotto, A., Jr., Wagner, J., & Meneguzzi, C. (2015). Effects of glyphosate and foliar application of micronutrients in transgenic soybean. Bioscience Journal, 31(2), 499-508. doi: 10.14393/BJ-v31n2a2015-22307

Moles, T. M., Pompeiano, A., Reyes, T. H., Scartazza, A., & Guglielminetti, L. (2016). The efficient physiological strategy of a tomato landrace in response to short-term salinity stress. Plant Physiology and Biochemistry, 109(1), 262-272. doi: 10.1016/j.plaphy.2016.10.008

Mrid, R. B., Benmrid, B, Hafsa, J., Boukcim, H., Sobeh, M., & Yasri, A. (2021). Secondary metabolites as biostimulant and bioprotectant agents: a review. Science of the Total Environment, 777(1), 146204. doi: 10.1016/j.scitotenv.2021.146204

Novais, R. D., Neves, J. C. L., Barros, N. D., Oliveira, A. D., Garrido, W. E., Araújo, J. D., & Lourenço, S. (1991). Métodos de pesquisa em fertilidade do solo. EMBRAPA SEA. https://www.embrapa.br/busca-de-publicacoes/-/publicacao/547925/metodos-de-avaliacao-da-fertilidade-do-solo#:~:text=Os%20mais %20empregados%20sao%3A%201,6)%20Analises%20quimicas%20de%20solo

Oliveira, M. C., Osipitan, A., Begcy, K., & Werle, R. (2020). Cover crops, hormones and herbicides: priming an integrated weed management strategy, Plant Science, 301(1), 110550, 1-5. doi: 10.1016/j.plantsci.2020.110550

Oliveira, R. S. de, Jr., Constantin, J., & Inoue, M. H. (2011). Biologia e manejo de plantas daninhas. Omnipax.

Perboni, A. T., Martinazzo, E. G., Silva, D. M., & Bacarin, M. A. (2015). Baixas temperaturas sobre a fluorescência da clorofila a em plantas de diferentes híbridos de canola. Ciência Rural, 45(1), 215-222. doi: 10.1590/0103-8478cr20131427

Santos, H. G., Jocomine, P. K. T., Anjos, L. H. C., Oliveira, V. A., Lumbrearas, J. F., Coelho, M. R., Almeida, J. A., Araujo, J. C., Fº., Oliveira, J. B., & Cunha, T. J. F. (2018). Sistema brasileiro de classificação de solos. EMBRAPA, Centro Nacional de Pesquisa de Solos. https://www.embrapa.br/busca-de-publicacoes/-/publicacao/1094003/sistema-brasileiro-de-classificacao-de-solos

Santos, V. M. dos, Vaz-de-Melo, A., Cardoso, D. P., Gonçalves, A. H., Sousa, D. D. C. V. de, & Silva, Á. R. (2017). Uso de bioestimulantes no crescimento de plantas de soja. Revista Verde de Agroecologia e Desenvolvimento Sustentável, 12(3), 512-517. doi: 10.18378/rvads.v12i3.4139

Silva, N. F., Clemente, G. S., Teixeira, M. B., Soares, F. A. L., Cunha, F. N., & Azevedo, L. O. da S. (2017). Use of foliar fertilizers for the specific physiological management of different soybean crop stages. American Journal of Plant Sciences, 8(4), 810. doi: 10.4236/ajps.2017.84056

Sousa, D. M. G., & Lobato, E. (2004). Cerrado: correção do solo e adubação (2a ed.). EMBRAPA Informação Tecnológica.

Stirbet, A. & Govindjee (2011). On the relation between the Kautsky effect (chlorophyll a fluorescence induction) and photosystem II: basics and applications of the OJIP fluorescence transient. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 104(1), 236-257. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2010.12.010

Strasser, R. J., Srivastava, A., & Tsimilli-Michael, M. (2000). The fluorescence transient as a tool to characterize and screen photosynthetic samples. In M. Yunus (Ed.), Probing photosynthesis: mechanisms, regulation and adaptation (pp. 445-483). London.

Traxler, C., Gaines, T. A., Küpper, A., Luemmen, P., & Dayan, F. E. (2023). The nexus between reactive oxygen species and the mechanism of action of herbicides. Journal of Biological Chemistry, 299(11), 105267, 1-19. doi: 10.1016/j.jbc.2023.105267

Tripathy, B. C., Mohapatra, A., & Gupta, I. (2007). Impairment of the photosynthetic apparatus by oxidative stress induced by photosensitization reaction of protoporphyrin IX. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 1767(6), 860-868. doi: 10.1016/j.bbabio.2007.03.008

Vanlerberghe, G. C. (2013). Alternative oxidase: a mitochondrial respiratory pathway to maintain Anli, M., Kaoua, M. E., Boutasknit, A., ben-Laouane, R., Toubali, S., Baslam, M., Lyamlouli, K., Hafidi, M., & Meddich, A. (2020). Seaweed extract application and arbuscular mycorrhizal fungal inoculation: a tool for promoting growth and development of date palm (Phoenix dactylifera L.) cv «Boufgous». South African Journal of Botany, 132(1), 15-21. doi: 10.1016/j.sajb.2020.04.004 DOI: https://doi.org/10.1016/j.sajb.2020.04.004

Beckie, H. J. (2011). Herbicide‐resistant weed management: focus on glyphosate. Pest Management Science, 67(9), 1037-1048. doi: 10.1002/ps.2195 DOI: https://doi.org/10.1002/ps.2195

Bontempo, A. F., Alves, F. M., Carneiro, G. D. O. P., Machado, L. G., Silva, L. O. D., & Aquino, L. A. (2016). Influência de bioestimulantes e nutrientes na emergência e no crescimento inicial de feijão, soja e milho. Revista Brasileira de Milho e Sorgo, 15(1), 86-93. doi: 10.18512/1980-6477/rbms.v15n1p86-93 DOI: https://doi.org/10.18512/1980-6477/rbms.v15n1p86-93

Buchanan, B. B., Gruissem, W., & Jones, R. L. (Eds.). (2015). Biochemistry and molecular biology of plants. John Wiley & Sons.

Calvo, P., Nelson, L., & Kloepper, J. W. (2014). Agricultural uses of plant biostimulants. Plant and Soil, 383(1), 3-41. doi: 10.1007/s11104-014-2131-8 DOI: https://doi.org/10.1007/s11104-014-2131-8

Carretero, D. M. (2008). Efeitos da inibição da protoporfirinogênio IX oxidase sobre as trocas gasosas e fluorescência da clorofila em plantas de soja (Glycine max L. Merrill). Dissertação de mestrado, Universidade Federal de Viçosa, Viçosa, MG, Brasil.

Cavalcante, W. S. da S., Silva, N. F. da, Teixeira, M. B., Cabral, F. R., Fº., Nascimento, P. E. R., & Corrêa, F. R. (2020). Eficiência dos bioestimulantes no manejo do déficit hídrico na cultura da soja. Irriga, 25(4), 754-763. doi: 10.15809/irriga.2020v25n4p754-763 DOI: https://doi.org/10.15809/irriga.2020v25n4p754-763

Chen, S., Yang, J., Zhang, M., Strasser, R. J., & Qiang, S. (2016). Classification and characteristics of heat tolerance in Ageratina adenophora populations using fast chlorophyll a fluorescence rise OJIP. Environmental and Experimental Botany, 122(1), 126-140. doi: 10.1016/j.envexpbot.2015.09.011 DOI: https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2015.09.011

Chittora, D., Meena, M., Barupal, T., Swapnil, P., & Sharma, K. (2020). Cyanobacteria as a source of biofertilizers for sustainable agriculture. Biochemistry and Biophysics Reports, 22(1), 100737. doi: 10.1016/j.bbrep.2020.100737 DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbrep.2020.100737

Choudhury, F. K., Rivero, R. M., Blumwald, E., & Mittler, R. (2017). Reactive oxygen species, abiotic stress and stress combination. The Plant Journal, 90(5), 856-867. doi: 10.1111/tpj.13299 DOI: https://doi.org/10.1111/tpj.13299

Christoffoleti, P. J., & Nicolai, M. (2016). Aspectos de resistência de plantas daninhas a herbicidas. Dissertação de mestrado, Universidade de São Paulo, Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Piracicaba, SP, Brasil.

Coelho, A. F., Corrêa, B. O., Freitas Pires, F. de, & Pereira, S. R. (2019). Avaliação da aplicação foliar de biofertilizante em quatro cultivares de soja. Ensaios e Ciência C Biológicas Agrárias e da Saúde, 23(1), 2-6. doi: 10.17921/1415-6938.2019v23n1p2-6 DOI: https://doi.org/10.17921/1415-6938.2019v23n1p2-6

Craigie, J. S. (2011). Seaweed extract stimuli in plant science and agriculture. Journal of Applied Phycology, 23(3), 371-393. doi: 10.1007/s10811-010-9560-4 DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-010-9560-4

Datta, A., Ullah, H., Tursun, N., Pornprom, T., Knezevic, S. Z., & Chauhan, B. S. (2017). Managing weeds using crop competition in soybean [Glycine max (L.) Merr.]. Crop Protection, 95(1), 60-68. doi: 10. 1016/j.cropro.2016.09.005 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cropro.2016.09.005

Dong, S., Wang, W., Jiang, Y., Ma, Z., Yan, C., Liu, L., & Cui, G. (2019). Antioxidant and proteomic analysis of soybean response to drought during soybean flowering. Ekoloji, 28(107), 2041-2052.

Dourado, D., Neto, Dario, G. J. A., Barbieri, A. P. P., & Martin, T. N. (2014). Ação de bioestimulante no desempenho agronômico de milho e feijão. Bioscience Journal, 30(1), 371-379.

Du Jardin, P. (2015). Plant biostimulants: definition, concept, main categories and regulation. Scientia Horticulturae, 196(1), 3-14. doi: 10.1016/j.scienta.2015.09.021 DOI: https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.021

El-Katony, T. M., Nour El-Dein, M. M., El-Fallal, A. A., Ibrahim, N. G., & Mousa, M. M. (2020). Substrate–fungus interaction on the enzymatic and non-enzymatic antioxidant activities of solid state fermentation system. Bioresources and Bioprocessing, 7(1), 1-11. doi: 10.1186/s40643-020-00316-8 DOI: https://doi.org/10.1186/s40643-020-00316-8

El-Samad, E. H. A., Glala, A. A., El Baset, A. A., & Nadia, M. O. (2019). Improving the establishment, growth and yield of tomato seedlings transplanted during summer season by using natural plant growth bio-stimulants. Middle East Journal of Agriculture Research, 8(1), 311-329.

Eullaffroy, P., Frankart, C., Aziz, A., Couderchet, M., & Blaise, C. (2009). Energy fluxes and driving forces for photosynthesis in Lemna minor exposed to herbicides. Aquatic Botany, 90(2), 172-178. doi: 10.1016/j.aquabot.2008.09.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2008.09.002

Ferreira, D. F. (2011). Sisvar: a computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, 35(6), 1039-1042. doi: 10.1590/S1413-70542011000600001 DOI: https://doi.org/10.1590/S1413-70542011000600001

Fraga, D. S., Agostinetto, D., Langaro, A. C., Oliveira, C., Ulguim, A. R., & Silva, J. D. G. (2019). Morphological and metabolic changes in soybean plants cultivated in irrigated rice rotation and as affected by imazapyr and imazapic herbicides carryover. Planta Daninha, 37(1), 1-10. doi: 10.1590/S0100-83582019370100023 DOI: https://doi.org/10.1590/s0100-83582019370100023

Garcia, V. V., Silva, M. A. de A. e, & Dalazen, G. (2024). Efeito da palha e da precipitação pluviométrica no controle de Amaranthus hybridus com Imazetapir + Flumioxazina. Semina: Ciências Agrárias, 45(5), 1579-1592. doi: 10.5433/1679-0359.2024v45n5p1579 DOI: https://doi.org/10.5433/1679-0359.2024v45n5p1579

Guan, X., Chen, X., Qiu, C., Qian, Y., Chen, J., Shao, C., Xie, J., Deng, G., & Peng, C. (2020). Effects of long-term herbicide application on the crops in soybean-peanut rotations in the red soil upland of Southern China. Field Crops Research, 248(1), 107723, 1-9. doi: 10.1016/j.fcr.2020.107723 DOI: https://doi.org/10.1016/j.fcr.2020.107723

Hasanuzzaman, M., Parvin, K., Bardhan, K., Nahar, K., Anee, T. I., Masud, A. A. C., & Fotopoulos, V. (2021). Biostimulants for the regulation of reactive oxygen species metabolism in plants under abiotic stress. Cells, 10(10) 2537, 1-29. doi: 10.3390/cells10102537 DOI: https://doi.org/10.3390/cells10102537

Joshi-Paneri, J., Chamberland, G., & Donnelly, D. (2020). Effects of Chelidonium majus and Ascophyllum nodosum extracts on growth and photosynthesis of soybean. Acta Agrobotanica, 73(1), 1-6. doi: 10.5586/aa.7313 DOI: https://doi.org/10.5586/aa.7313

Karpstein, C. L., Jr., & Waureck, A. (2020). Associação do uso de bioestimulante e lactofen nas características e na produtividade da cultura da soja. Revista Scientia Rural, 1(1), 1-9.

Krenchinski, F. H., Castro, E. B. de, Cesto, V. J. S., Belapart, D., Rodrigues, D. M., Carbonari, C. A., & Velini, E. D. (2019). Naphthalic anhydride increases tolerance of common bean to herbicides. Journal of Plant Protection Research, 59(3), 383-391. doi: 10.24425/jppr.2019.129754 DOI: https://doi.org/10.24425/jppr.2019.129754

Kulkarni, M. G., Rengasamy, K. R., Pendota, S. C., Gruz, J., Plačková, L., Novák, O., Doležal, K., & Van Staden, J. (2019). Bioactive molecules derived from smoke and seaweed Ecklonia maxima showing phytohormone-like activity in Spinacia oleracea L. New Biotechnology, 48(1), 83-89. doi: 10.1016/j.nbt.2018.08.004 DOI: https://doi.org/10.1016/j.nbt.2018.08.004

Lamego, F. P., Ruchel, Q., Kaspary, T. E., Gallon, M., Basso, C. J., & Santi, A. L. (2013). Habilidade competitiva de cultivares de trigo com plantas daninhas. Planta Daninha, 31(3), 521-531. doi: 10.1590/S0100-83582013000300004 DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-83582013000300004

Machado, E. C., Schmidt, P. T., Medina, C. L., & Ribeiro, R. V. (2005). Respostas da fotossíntese de três espécies de citros a fatores ambientais. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 40(1), 1161-1170. doi: 10.1590/S0100-204X2005001200002 DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-204X2005001200002

Mącik, M., Gryta, A., & Frąc, M. (2020). Biofertilizers in agriculture: an overview on concepts, strategies and effects on soil microorganisms. Advances in Agronomy, 162(1), 31-87. doi: 10.1016/bs.agron.2020.02.001 DOI: https://doi.org/10.1016/bs.agron.2020.02.001

Mahmoud, S. H., Salama, D. M., El-Tanahy, A. M., & El-Samad, E. H. A. (2019). Utilization of seaweed (Sargassum vulgare) extract to enhance growth, yield and nutritional quality of red radish plants. Annals of Agricultural Sciences, 64(2), 167-175. doi: 10.1016/j.aoas.2019.11.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aoas.2019.11.002

Mansoor, S., Ali Wani, O., Lone, J. K., Manhas, S., Kour, N., Alam, P., Ahmad, A., & Ahmad, P. (2022). Reactive oxygen species in plants: from source to sink. Antioxidants, 11(2), 225, 1-14. doi: 10.3390/antiox11020225 DOI: https://doi.org/10.3390/antiox11020225

Maxwell, K., & Johnson, G. N. (2000). Chlorophyll fluorescence - a practical guide. Journal of Experimental Botany, 51(345), 659-668. doi: 10.1093/jexbot/51.345.659 DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/51.345.659

Merotto, A., Jr., Wagner, J., & Meneguzzi, C. (2015). Effects of glyphosate and foliar application of micronutrients in transgenic soybean. Bioscience Journal, 31(2), 499-508. doi: 10.14393/BJ-v31n2a2015-22307 DOI: https://doi.org/10.14393/BJ-v31n2a2015-22307

Moles, T. M., Pompeiano, A., Reyes, T. H., Scartazza, A., & Guglielminetti, L. (2016). The efficient physiological strategy of a tomato landrace in response to short-term salinity stress. Plant Physiology and Biochemistry, 109(1), 262-272. doi: 10.1016/j.plaphy.2016.10.008 DOI: https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2016.10.008

Mrid, R. B., Benmrid, B, Hafsa, J., Boukcim, H., Sobeh, M., & Yasri, A. (2021). Secondary metabolites as biostimulant and bioprotectant agents: a review. Science of the Total Environment, 777(1), 146204. doi: 10.1016/j.scitotenv.2021.146204 DOI: https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2021.146204

Novais, R. D., Neves, J. C. L., Barros, N. D., Oliveira, A. D., Garrido, W. E., Araújo, J. D., & Lourenço, S. (1991). Métodos de pesquisa em fertilidade do solo. EMBRAPA SEA. https://www.embrapa.br/busca-de-publicacoes/-/publicacao/547925/metodos-de-avaliacao-da-fertilidade-do-solo#:~:text=Os%20mais %20empregados%20sao%3A%201,6)%20Analises%20quimicas%20de%20solo

Oliveira, M. C., Osipitan, A., Begcy, K., & Werle, R. (2020). Cover crops, hormones and herbicides: priming an integrated weed management strategy, Plant Science, 301(1), 110550, 1-5. doi: 10.1016/j.plantsci.2020.110550 DOI: https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2020.110550

Oliveira, R. S. de, Jr., Constantin, J., & Inoue, M. H. (2011). Biologia e manejo de plantas daninhas. Omnipax.

Perboni, A. T., Martinazzo, E. G., Silva, D. M., & Bacarin, M. A. (2015). Baixas temperaturas sobre a fluorescência da clorofila a em plantas de diferentes híbridos de canola. Ciência Rural, 45(1), 215-222. doi: 10.1590/0103-8478cr20131427 DOI: https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20131427

Santos, H. G., Jocomine, P. K. T., Anjos, L. H. C., Oliveira, V. A., Lumbrearas, J. F., Coelho, M. R., Almeida, J. A., Araujo, J. C., Fº., Oliveira, J. B., & Cunha, T. J. F. (2018). Sistema brasileiro de classificação de solos. EMBRAPA, Centro Nacional de Pesquisa de Solos. https://www.embrapa.br/busca-de-publicacoes/-/publicacao/1094003/sistema-brasileiro-de-classificacao-de-solos

Santos, V. M. dos, Vaz-de-Melo, A., Cardoso, D. P., Gonçalves, A. H., Sousa, D. D. C. V. de, & Silva, Á. R. (2017). Uso de bioestimulantes no crescimento de plantas de soja. Revista Verde de Agroecologia e Desenvolvimento Sustentável, 12(3), 512-517. doi: 10.18378/rvads.v12i3.4139 DOI: https://doi.org/10.18378/rvads.v12i3.4139

Silva, N. F., Clemente, G. S., Teixeira, M. B., Soares, F. A. L., Cunha, F. N., & Azevedo, L. O. da S. (2017). Use of foliar fertilizers for the specific physiological management of different soybean crop stages. American Journal of Plant Sciences, 8(4), 810. doi: 10.4236/ajps.2017.84056 DOI: https://doi.org/10.4236/ajps.2017.84056

Sousa, D. M. G., & Lobato, E. (2004). Cerrado: correção do solo e adubação (2a ed.). EMBRAPA Informação Tecnológica.

Stirbet, A. & Govindjee (2011). On the relation between the Kautsky effect (chlorophyll a fluorescence induction) and photosystem II: basics and applications of the OJIP fluorescence transient. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 104(1), 236-257. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2010.12.010 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2010.12.010

Strasser, R. J., Srivastava, A., & Tsimilli-Michael, M. (2000). The fluorescence transient as a tool to characterize and screen photosynthetic samples. In M. Yunus (Ed.), Probing photosynthesis: mechanisms, regulation and adaptation (1 ed., pp. 445-483). London.

Traxler, C., Gaines, T. A., Küpper, A., Luemmen, P., & Dayan, F. E. (2023). The nexus between reactive oxygen species and the mechanism of action of herbicides. Journal of Biological Chemistry, 299(11), 105267, 1-19. doi: 10.1016/j.jbc.2023.105267 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jbc.2023.105267

Tripathy, B. C., Mohapatra, A., & Gupta, I. (2007). Impairment of the photosynthetic apparatus by oxidative stress induced by photosensitization reaction of protoporphyrin IX. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 1767(6), 860-868. doi: 10.1016/j.bbabio.2007.03.008 DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2007.03.008

Vanlerberghe, G. C. (2013). Alternative oxidase: a mitochondrial respiratory pathway to maintain metabolic and signaling homeostasis during abiotic and biotic stress in plants. International Journal of Molecular Sciences, 14(4), 6805-6847. doi: 10.3390/ijms14046805 DOI: https://doi.org/10.3390/ijms14046805

Vargas, L., Silva, D. R. O., Agostinetto, D., Matallo, M. B., Santos, F. M., Almeida, S. D. B., Chavarria, G., & Silva, D. F. P. (2014). Glyphosate influence on the physiological parameters of Conyza bonariensis biotypes. Planta Daninha, 32(1), 151-159. doi: 10.1590/S0100-83582014000100017 DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-83582014000100017

Yakhin, O. I., Lubyanov, A. A., Yakhin, I. A., & Brown, P. H. (2017). Biostimulants in plant science: a global perspective. Frontiers in Plant Science, 7(1), 2049. doi: 10.3389/fpls.2016.02049 DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2016.02049

Yusuf, M. A., Kumar, D., Rajwanshi, R., Strasser, R. J., Tsimilli-Michael, M., & Sarin, N. B. (2010). Overexpression of γ-tocopherol methyl transferase gene in transgenic Brassica juncea plants alleviates abiotic stress: physiological and chlorophyll a fluorescence measurements. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 1797(8), 1428-1438. doi: 10.1016/j.bbabio.2010.02.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2010.02.002

Zanatta, C. B., Benevenuto, R. F., Nodari, R. O., & Agapito-Tenfen, S. Z. (2020). Stacked genetically modified soybean harboring herbicide resistance and insecticide rCry1Ac shows strong defense and redox homeostasis disturbance after glyphosate-based herbicide application. Environmental Sciences Europe, 32(104), 1-17. doi: 10.1186/s12302-020-00379-6 DOI: https://doi.org/10.1186/s12302-020-00379-6

Zhou, R., Kan, X., Chen, J., Hua, H., Li, Y., Ren, J., Feng, K., Liu, H., Deng, D., & Yin, Z. (2019). Drought-induced changes in photosynthetic electron transport in maize probed by prompt fluorescence, delayed fluorescence, P700 and cyclic electron flow signals. Environmental and Experimental Botany, 158(1), 51-62. doi: 10.1016/j.envexpbot.2018.11.005 DOI: https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2018.11.005

Zobiole, L. H. S., Oliveira, R. S., Jr., Constantin, J., & Biffe, D. F. (2011). Prevenção de injúrias causadas por glyphosate em soja RR por meio do uso de aminoácido. Planta Daninha, 29(1), 195-205. doi: 10.1590/S0100-83582011000100022 DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-83582011000100022

Downloads

Publicado

2024-12-03

Como Citar

Andrade, C. L. L. de, Silva, A. G. da, Costa, A. C. da, Teixeira, M. B., Silva, A. A. da, Morais, W. A., … Soares, F. A. L. (2024). Potencial de bioestimulante na mitigação de danos de herbicidas aplicados em pós-emergência na cultura da soja. Semina: Ciências Agrárias, 45(6), 1975–1996. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2024v45n6p1975

Edição

Seção

Artigos

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)

1 2 > >> 

Artigos Semelhantes

Você também pode iniciar uma pesquisa avançada por similaridade para este artigo.