Influência de plantas utilizadas na diversificação agrícola sobre o nematoide Heterorhabditis amazonensis
DOI:
https://doi.org/10.5433/1679-0359.2021v42n6SUPL2p3553Palavras-chave:
Controle biológico conservativo, Controle inundativo, Conservação, Nematoides entomopatogênicos, Persistência.Resumo
Em um sistema agrícola, a fim de aumentar o controle biológico natural, plantas que atraem inimigos naturais podem ser cultivadas junto à cultura principal. Porém, os efeitos destas plantas sobre nematoides-entomopatogênicos (NEPs), importante agentes de controle de pragas de solo, e sua ação na conservação destes, são desconhecidos. Com o objetivo de avaliar o efeito de algumas destas plantas sobre NEPs, foram montados dois experimentos em casa-de-vegetação. O primeiro observou o efeito das plantas Crotalaria spectabilis, Crotalaria breviflora e Tagetes erecta sobre a persistência e infectividade de Heterorhabditis amazonensis isolado RSC 5 durante 27 dias, comparadas a um tratamento-controle sem plantas. Já o segundo experimento avaliou o efeito de C. breviflora e T. erecta, com a presença ou não do adulto do predador Calosoma granulatum no deslocamento do nematoide. Os resultados indicaram que as plantas não influenciaram na persistência dos nematoides em longo prazo nem na infectividade e no deslocamento de H. amazonensis. Porém, a planta C. spectabilis possibilitou a maior persistência de nematoides no substrato em curto prazo, e T. erecta causou a supressão mais rápida da população inicial de JIs. No segundo experimento observou-se que nem a presença do predador e das plantas afetou a capacidade de deslocamento do nematoide no solo no período de 5 dias. Estes resultados mostram que o conhecimento prévio das plantas a serem utilizadas na diversificação agrícola pode auxiliar no controle inundativo de pragas por NEPs.Downloads
Referências
Andaló, V., Santos, V., Moreira, G. F., Moreira, C., Freire, M., & Moino, A. (2012). Movement of Heterorhabditis amazonensis and Steinernema arenarium in search of corn fall armyworm larvae in artificial conditions. Scientia Agricola, 69(3), 226-230. doi: 10.1590/S0103-90162012000300008
Araj, S., Shields, M. W., & Wratten, S. D. (2019). Weed floral resources and commonly used insectary plants to increase the efficacy of a whitefly parasitoid. BioControl, 64(5), 553-561. doi: 10.1007/s1052 6-019-09957-x
Baermann, G. (1917). Eine einfache methode zur auffindung von Ancylostomum (Nematoden) larven in erdproben. Geneeskunding Tijdschrift voor Nederlandsch-Indië, 57, 131-137.
Berriel, V., Monza, J., & Perdomo, C. H. (2020). Cover crop selection by jointly optimizing biomass productivity, biological nitrogen fixation, and transpiration efficiency: application to two Crotalaria species. Agronomy, 10(8), 1116. doi: 10.3390/agronomy10081116
Calabuche-Gómez, G., Regalado, R. E., Perera, D. G., Cabrera, I. M., Soler, D. M., & Hernández, M. G. R. (2019). Efecto de factores abióticos sobre la viabilidad e infectividade de Heterorhabditis amazonensis Andaló et al. cepa HC1. Revista de Protección Vegetal, 34(3), 1-9. Retrieved form http://scielo.sld.cu/ scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1010-27522019000300004&lng=es&nrm=iso
Campos-Herrera, R., El-Borai, F. E., Martín, J. A. R., & Duncan, L. W. (2016). Entomopathogenic nematode food web assemblages in Florida natural areas. Soil Biology and Biochemistry, 93, 105-114. doi: 10.101 6/j.soilbio.2015.10.022
Campos-Herrera, R., Stuart, R. J., El-Borai, F., Gutierrez, C., & Duncan, L. (2010). Entomopathogenic nematode ecology and biological control in Florida citrus orchards. In A. Ciancio, & K. G. Mukerji (Eds.), Integrated management of arthropod pests and insect borne diseases (pp. 101-130). Dordrecht: Springer.
Dutky, S. R., Thompson, J. V., & Cantwe, G. E. (1964). A technique for the mass propagation of the DD-136 nematode. Journal of Insect Pathology, 6(4), 417-422.
Ennis, D. E., Dillon, A. B., & Griffin, C. T. (2010). Simulated roots and host feeding enhance infection of subterranean insect by the entomopathogenic nematode Steinernema carpocapsae. Journal of Invertebrate Pathology, 103(2), 140-143. doi: 10.1016/j.jip.2009.11.004
Galbieri, R., Fuzattoii, M. G., Ciaii, E., Welteri, A. M., & Fanan, S. (2011). Desempenho de genótipos de algodoeiro na presença ou não de rotação de cultura com Crotalaria spectabilis, em área infestada com Meloidogyne incognita. Tropical Plant Pathology, 36(5), 303-307. doi: 10.1590/S1982-567620110005 00005
Gardiano, C. G., Dallemole-Giaretta, R., Lopes, E. A., Zooca, R. J. F., Ferraz, S., & Freitas, L. G. (2010). Atividade nematicide de extratos de sementes de espécies de Crotalaria sobre Meloidogyne javanica. Revista Trópica - Ciências Agrárias e Biológicas, 4(1), 1-5. doi: 10.0000/rtcab.v4i1.76
Gassmann, A. J., Stock, P., Tabashnik, B. E., & Singer, M. S. (2010). Tritrophic effects of host plants on a herbivore-pathogen interaction. Annals of the Entomological Society of America, 103(3), 371-378. doi: 10.1603/AN09130
Grubisic, D., Uroic, G., Ivosevic, A., & Grdisa, M. (2018). Nematode control by the use of antagonistic plants. Agriculturae Conspectus Scientificus, 83(4), 269-275. Retrieved from https://acs.agr.hr/acs/ index.php/acs/article/view/1518
Hass, B., Griffin, C. T., & Downes, M. J. (1999). Persistence of Heterorhabditis infective juveniles in soil: comparison of extraction and infectivity measurements. Journal of Nematologists, 31(4), 508-516. Retrieved from https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2620384/
Hazir, S., Shapiro-Ilan, D. I., Hazir, C., Leite, L. G., Cakmak, I., & Olson, D. (2016). Multifaceted effects of host plants on entomopathogenic nematodes. Journal of Invertebrate Pathology, 135, 53-59. doi: 10.10 16/j.jip.2016.02.004
Helmberger, M. S., Shields, E. J., & Wickings, K. G. (2017). Ecology of belowground biological control: Entomopathogenic nematode interactions with soil biota. Applied Soil Ecology, 121, 201-213. doi: 10. 1016/j.apsoil.2017.10.013
Hodson, A. K., Siegel, J. P., & Lewis, E. E. (2012). Ecological influence of the entomopathogenic nematode, Steinernema carpocapsae, on pistachio orchard soil arthropods. Pedobiologia, 55(1), 51-58. doi: 10.10 16/j.pedobi.2011.10.005
Hooks, C. R. R., Wang, K. H., Ploeg, A., & McSorley, R. (2010). Using marigold (Tagetes spp.) as a cover crop to protect crops from plant-parasitic nematodes. Applied Soil Ecology: A Section of Agriculture, Ecosystems & Environment, 46(3), 307-320. doi: 10.1016/j.apsoil.2010.09.005
Jagodic, A., Ipavec, N., Trdan, S., & Laznik, Z. (2017). Attraction behaviors: Are synthetic volatiles, typically emitted by insect-damaged Brassica nigra roots, navigation signals for entomopathogenic nematodes (Steinernema and Heterorhabditis)? Biocontrol, 62(4), 515-524. doi: 10.1007/s10526-017-9 796-x
Kanagy, J. M. N., & Kaya, H. K. (1996). The possible role of marigold roots and α-terthienyl in mediating host-finding by Steinernematid nematodes. Nematologica, 42(2), 220-231. doi: 10.1163/004325996X0 0066
Koppenhofer, A. M., Shapiro-Ilan, D. I., & Hitpold, I. (2020). Entomopathogenic nematodes in sustainable food production. Frontiers in Sustainable Food Systems, 4, 1-14. doi: 10.3389/fsufs.2020.00125
Lewis, E. E., & Clarke, D. J. (2012). Nematode parasites and entomopathogens. In F.Vega, & H. Kaya (Eds.), Insect pathology (pp. 395-424). Cambrige: Academic Press.
Mahmoud, M. F. (2016). Biology and use of entomopathogenic nematodes in insect pests biocontrol, a generic view. Cercetari Agronomice in Moldava, 49(4), 85-105. doi: 10.1515/cerce-2016-0039
Mertz, N. R., Agudelo, E. J. G., Sales, F. S., Rohde, C., & Moino, A., Jr. (2014). Phoretic dispersal of the entomopathogenic nematode Heterorhabditis amazonensis by the beetle Calosoma granulatum. Phytoparasitica, 42(2), 179-187. doi: 10.1007/s12600-013-0349-2
Osei, K., Gowen, S. R., Pembroke, B., Brandenburg, R. L., & Jordan, D. L. (2010). Potential of leguminous cover crops in management of a mixed population of root-knot nematodes (Meloidogyne spp.). Journal of Nematology, 42(3), 173-178. Retrieved from https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC33804 90/
Parra, J. R. P. (1998). Raising insects for studies of pathogens. In S. B. Alves (Eds.), Microbial control of insects (pp. 1015-1037). Piracicaba: FEALQ.
Pasini, A. (1995). Biologia e técnica de criação do predador Calosoma granulatum Perty, 1830 (Coleoptera: Carabidae) em Anticarsia gemmatalis Hübner, 1818 (Lepidoptera: Noctuidae), lagarta-da-soja. Tese de doutorado, Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiróz”, Piracicaba, SP, Brasil.
Poinar, G. O., Jr., & Grewal, P. S. (2012). History of entomopathogenic nematology. Journal of Nematology, 44(2), 153-161. Retrieved from https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3578475/
Quispe, R., Mazón, M., & Rodríguez-Berrío, A. (2017). Do refuge plants favour natural pest control in maize crops? Insects, 8(3), 71. doi: 10.3390/insects8030071
Ratnadass, A., Fernandes, P., Avelino, J., & Habib, R. (2012). Plant species diversity for sustainable management of crop pests and diseases in agroecosystems: a review. Agronomy for Sustainable Development, 32(1), 273-303. doi: 10.1007/s13593-011-0022-4
Santana, S. M., Dias-Arieira, C. R., Biela, F., Cunha, T. P. L., Chiamolera, F. M., Puerari, H. H., & Fontana, L. F. (2012). Manejo de Pratylenchus zeae por plantas antagonistas, em solos de áreas de cultivo de cana-de-açúcar. Nematropica, 42(1), 63-71. Retrieved from https://journals.flvc.org/nematropica/ article /view/79583
Santhi, V. S., Salame, L., Muklada, H., Azaizeh, H., Haj-Zaroubi, M., Awwad, S., Landau, S. Y., Glazer, I. (2019). Toxicity of phenolic compounds to entomopathogenic nematodes: a case study with Heterorhabditis bacteriophora exposed to lentisk (Pistacia lentiscus) extracts and their chemical components. Journal of Invertebrate Pathology, 160, 43-53. doi: 10.1016/j.jip.2018.12.003
Stuart, R. J., Barbercheck, M. E., & Grewal, P. S. (2015). Entomopathogenic nematodes in the soil environment: distribution interactions and the influence of biotic and abiotic factors. In: R. Campos-Herrera (Ed.), Nematode pathogenesis of insects as other pests (pp. 97-137). Dordrecht: Springer.
Supriyadi, R., Wijayanti, R., Arniputri, B., Puspitarini, N., & Dwiyatno, M. H. (2019). The effect of Crotalaria juncea plant in coffee ecosystem to the diversity and abundance of predators and parasitoids insects. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 250(1), 1-6. doi: 10.1088/1755-13 15/250/1/012018
Tavares, W. S., Cruz, W. S. I., Silva, R. B., Figueiredo, M. L. C., Ramalho, F. S., Serrão, J. E. V., & Zanuncio, J. C. (2010). Soil organisms associated to the weed suppressant Crotalaria juncea (Fabaceae) and its importance as a refuge for natural enemies. Planta Daninha, 29(3), 473-479. doi: 10.1590/S010 0-83582011000300001
Thoden, T. C., & Boppré, M. (2010). Plants producing pyrrolizidine alkaloids: Sustainable too nematode management? Nematology, 12(1), 1-24. doi: 10.1163/138855409X12549869072248
Turlings, T. C. J., Hiltpold, I., & Rasmann, S. (2012). The importance of root-produces volatiles as foraging cues for entomopathogenic nematodes. Plant Soil, 358(1), 51-60. doi: 10.1007/s11104-012-1295-3
Woodring, J. L., & Kaya, H. K. (1988). Steinernematid and heterorhabditid nematodes: handbook of biology and techniques. Fayetteville: Arkansas Agricultural Experimental Station.
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2021 Semina: Ciências Agrárias
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Semina: Ciências Agrárias adota para suas publicações a licença CC-BY-NC, sendo os direitos autorais do autor, em casos de republicação recomendamos aos autores a indicação de primeira publicação nesta revista.
Esta licença permite copiar e redistribuir o material em qualquer meio ou formato, remixar, transformar e desenvolver o material, desde que não seja para fins comerciais. E deve-se atribuir o devido crédito ao criador.
As opiniões emitidas pelos autores dos artigos são de sua exclusiva responsabilidade.
A revista se reserva o direito de efetuar, nos originais, alterações de ordem normativa, ortográfica e gramatical, com vistas a manter o padrão culto da língua e a credibilidade do veículo. Respeitará, no entanto, o estilo de escrever dos autores. Alterações, correções ou sugestões de ordem conceitual serão encaminhadas aos autores, quando necessário.