Análise comparativa da produção de hormônios e perfis de expressão gênica em tecido uterino ovino durante o ciclo estral sincronizado usando acetato de medroxiprogesterona mais eCG e análogo de prostaglandina
DOI:
https://doi.org/10.5433/1679-0359.2021v42n6p3321Palavras-chave:
Ciclo estral, Receptor de progesterona, Receptor-alfa de estradiol, IFNAR1, Ovino.Resumo
A combinação de acetato de medroxiprogesterona (MPA) com gonadotrofina coriônica (eCG) é amplamente utilizada para sincronizar o estro de ovelhas, mas seus possíveis efeitos sobre a expressão gênica em tecido uterino não foram elucidados. Para avaliar o efeito dos protocolos MPA + eCG ou análogo de prostaglandina (PA) sobre a taxa de sincronização do estro, bem como na futura produção hormonal e expressão gênica em tecido uterino, 14 ovelhas Santa Inês foram selecionadas. O grupo MPA + eCG (n=7) recebeu a inserção de esponjas impregnadas de MPA por via intravaginal por 14 dias e 350 UI de eCG no dia da retirada da esponja. O grupo PA recebeu duas doses de 100 ug de PA administradas com 12 dias de intervalo. As ovelhas foram avaliadas quanto à taxa de sincronização do estro, concentração sérica de progesterona (P4) e estradiol (E2). Além disso, foram examinadas a expressão do receptor de estradiol (ERalfa), receptor de progesterona (P4R) e localização do receptor de interferon (IFNAR1), a partir de amostras de tecido uterino coletadas 15 dias após o acasalamento. A taxa de sincronização do estro foi 100% (n = 7/7) e 57,14% (n = 4/7) nos grupos MPA + eCG e PA, respectivamente. Além disso, o grupo MPA + eCG apresentou maior concentração sérica de P4 em comparação com o grupo PA (P menor 0,05). No entanto, a concentração sérica de E2 não diferiu entre os grupos testados (P maior 0,05). A expressão relativa de RNAm para P4R e ERalfa analisado por PCR em tempo real e imunodetecção de IFNAR1 foi semelhante entre os grupos testados (P maior 0,05). Em conclusão, o tratamento com MPA + eCG melhora a taxa de sincronização do estro e a produção de progesterona endógena; contudo, não afeta a regulação da expressão de receptores de esteroides sexuais e IFNAR1 no tecido uterino de ovinos.Downloads
Não há dados estatísticos.
Referências
Abecia, J. A., Forcada, F., & González-Bulnes, A. (2012). Hormonal control of reproduction in small ruminants. Animal Reproduction Science, 130(3-4), 173-179. doi: 10.1016/j.anireprosci.2012.01.011
Anjos, D. S. dos, Vital, A. F., Lainetti, P. F., Leis, A. F., F., Dalmolin, F., Elias, F., Fonseca-Alves, C. E. (2019). Deregulation of VEGFR-2 and PDGFR expression and microvascular density in a triple-negative model of canine malignant mammary tumors with lymph node or lung metastasis. Veterinary Science, 6(1), 1-12. doi: 10.3390/vetsci6010003
Araujo, R. R., Ginther, O. J., Ferreira, J. C., Palhão, M. M., Beg, M. A., & Wiltbank, M. C. (2009). Role of follicular estradiol-17beta in timing of luteolysis in heifers. Biology of Reproduction, 81(2), 426-437. doi: 10.1095/biolreprod.108.073825
Arsoy, D., & Sağmanlıgil, V. (2018). Reproductive cycles in white Karaman ewes: comparison of ovarian hormone secretion and reproductive behavior in non-pregnant and pregnant ewes in semi-intensive conditions. Acta Scientiarum. Animal Sciences, 40(1), 1-7. doi: 10.4025/actascianimsci.v40i1.39908
Bartlewski, P. M., Baby, T. E., & Giffin, J. L. (2011). Reproductive cycles in sheep. Animal Reproduction Science, 124(3-4), 259-268. doi: 10.1016/j.anireprosci.2011.02.024
Bartlewski, P. M., Beard, A. P., Cook, S. J., Chandolia, R. K, Honaramooz, A., & Rawlings, N. C. (1999). Ovarian antral follicular dynamics and their relationships with endocrine variables throughout the oestrous cycle in breeds of sheep differing in prolificacy. Journal of Reproduction and Fertility, 115(1), 111-124. doi: 10.1530/jrf.0.1150111
Bazer, F. W. (2013). Pregnancy recognition signaling mechanisms in ruminants and pigs. Journal of Animal Science and Biotechnology, 4(1), 1-10. doi: 10.1186/2049-1891-4-23
Bazer, F. W., Spencer, T. E., & Ott, T. L. (1997). Interferon tau: a novel pregnancy recognition signal. American Journal of Reproductive Immunology, 37(6), 412-20. doi: 10.1111/j.1600-0897.1997.tb0025 3.x
Bragança, G. M., Batista, R. I. T. P., Souza-Fabjan, J. M. G., Alfradique, V. A. P., Arashiro, E. K. N., Pinto, P. H. N.,… Brandão, F. Z. (2021). Exogenous progestogens differentially alter gene expression of immature cumulus-oocyte complexes in sheep. Domestic Animal Endocrinology, 74, 106518. doi: 10.1016/j.domaniend.2020.106518
Brooks, K., & Spencer, T. (2015). Biological roles of interferon tau (IFNT) and type I IFN receptors in elongation of the ovine conceptus. Biology of Reproduction, 92(2), 1-10. doi: 1095/biolreprod.114.1241 56
Cosentino, I. O., Balaro, M. F. A., Arashiro, E. K. N., Santos, J. D. R., Carvalho, A. B. S., Clariget, R. P.,… Brandão, F. Z. (2019). Hormonal protocols for early resynchronization of ovulation in ewes: The use of progestagens, eCG, and inclusion of early pregnancy diagnosis with color Doppler ultrasound. Theriogenology, 133(15), 113-118. doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.04.033
Gao, X., Zhang Q., Zhu, M., Li, X., Guo, Y., Pang, J.,… Wang, F. (2019). Effects of l-arginine on endometrial estrogen receptor α/β and progesterone receptor expression in nutrient-restricted sheep. Theriogenology, 138(15), 137-144. doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.07.018
García-Palencia, P., Sánchez, M. A., Nieto, A., Vilar, M. P., González, M., Veiga-Lopez, A.,… Flores, J. M. (2007). Sex steroid receptor expression in the oviduct and uterus of sheep with estrus synchronized with progestagen or prostaglandin analogues. Animal Reproduction Science, 97(1-2), 25-35. doi: 10.1016/j. anireprosci.2006.01.001
Garoussi, M. T., Mavadati, O., Bahonar, M., & Ragh, M. J. (2020). The effect of medroxyprogesterone acetate with or without eCG on conception rate of fat-tail ewes in out of breeding season. Tropical Animal Health and Production, 52(4), 1617-1622. doi: 10.1007/s11250-019-02159-8
Gonzalez-Bulnes, A., Menchaca, A., Martin, G. B., & Martinez-Ros, P. (2020). Seventy years of progestagen treatments for management of the sheep oestrous cycle: where we are and where we should go. Reproduction, Fertility and Development, 32(5), 441-452. doi: 10.1071/RD18477
Letelier, C. A., Contreras-Solisa, I., García-Fernández, R. A., Sánchez, M. A., García-Palencia, P., Sánchez, B., Gonzalez-Bulnes, A. (2011). Effects of oestrus induction with progestagens or prostaglandin analogues on ovarian and pituitary function in sheep. Animal Reproduction Science, 126(1-2), 61-69. doi: 10.1016/j.anireprosci.2011.04.012
Livak, K. J., & Schmittgen, T. D. (2001). Analysis of relative gene expression data using real time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) method. Methods, 25(4), 402-408. doi: 10.1006/meth. 2001.1262
Ma, W., Song, H., Das, S. K., Paria, B. C., & Dey, S. K. (2003). Estrogen is a critical determinant that specifies the duration of the window of uterine receptivity for implantation. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100(5), 2963-2968. doi: 10.1073/pnas.0530162100
Martinez-Ros, P., & Gonzalez-Bulnes, A. (2019). Efficiency of CIDR-based protocols including GnRH instead of eCG for estrus synchronization in sheep. Animals, 9(4), 1-11. doi: 10.3390/ani9040146
Martinez-Ros, P., Rios-Abellan, A., & Gonzalez-Bulnes, A. (2019). Influence of progesterone-treatment length and eCG administration on appearance of estrous behavior, ovulatory success and fertility in sheep. Animals, 9(1), 1-9. doi: 10.3390/ani9010009
Nakafeero, A., Hassen, A., & Lehloenya, K. C. (2020). Investigation of ram effect and eCG usage in progesterone based oestrous synchronization protocols on fertility of ewes following fixed time artificial insemination. Small Ruminant Research, 183, 106034. doi: 10.1016/j.smallrumres.2019.106034
Okumu, L. A., Forde, N., Fahey, A. G., Fitzpatrick, E., Roche, J. F., Crowe, M. A., & Lonergan, P. (2010). The effect of elevated progesterone and pregnancy status on mRNA expression and localisation of progesterone and oestrogen receptors in the bovine uterus. Reproduction, 140(1), 143-153. doi: 10.15 30/REP-10-0113
Robertshaw, I., Blan, F., & Das, S. K. (2016). Mechanisms of uterine estrogen signaling during early pregnancy in mice: an update Journal of Molecular Endocrinology, 56(3), 127-138. doi: 10.1530/JME-15-0300
Rosasco, S. L., Beard, J. K., Hallford, D. M., & Summers, A. F. (2019). Evaluation of estrous synchronization protocols on ewe reproductive efficiency and profitability. Animal Reproduction Science, 210, 106191. doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.106191
Rosenfeld, C. S., Han, C., Alexenko, A. P., Spencer, T. E., & Roberts, R. M. (2002). Expression of interferon receptor subunits, IFNAR1 and IFNAR2, in the ovine uterus. Biology of Reproduction, 67(3), 847-853. doi: 10.1095/biolreprod.102.004267
Rostami, B., Hajizadeh, R., Shahir, M. H., & Aliyari, D. (2017). The effect of post-mating hCG or progesterone administration on reproductive performance of Afshari × Booroola-Merino crossbred ewes. Tropical Animal Health and Production, 49(2), 245-250. doi: 10.1007/s11250-016-1183-6
Ruiz-González, I., Sánchez, M. A., García-Fernández, R. A., García-Palencia, P., Sánchez, B., Letelier, C. A., Flores, J. M. (2011). Endometrial expression of IFNAR-1 and oxytocin receptor (OTR) is not improved by prostaglandin analogues when compared to progestagens in ewes. Reproduction in Domestic Animals, 47(2), 274-280. doi: 10.1111/j.1439-0531.2011.01852.x
Ruiz-González, I., Sánchez M. A., García-Palencia P., Sánchez B., García-Fernández, R. A., González-Bulnes A., & Flores, J. M. (2012). Differences in uterine immunoexpression of PR, ERα and OTR when comparing prostaglandin- to progestagen-based protocols for ovine estrus synchronization. Animal Reproduction Science, 133(1), 93-100. doi: 10.1016/j.anireprosci.2012.06.015
Swelum, A. A., Alowaimer, A. N., & Abouheif, M. A. (2015). Use of fluorogestone acetate sponges or controlled internal drug release for estrus synchronization in ewes: effects of hormonal profiles and reproductive performance. Theriogenology, 84(4), 498-503. doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.03.018
Takahashi, H., Haneda, S., Kayano, M., & Matsui, M. (2016). Differences in progesterone concentrations and mRNA expressions of progesterone receptors in bovine endometrial tissue between the uterine horns ipsilateral and contralateral to the corpus luteum. Journal of Veterinary Medical Science, 78(4), 613-618. doi: 10.1292/jvms.15-0366
Tortorella, R. D., Ferreira, R., Santos, J. T., Andrade, O. S., Neto, Barreta, M. H., Oliveira, J. F.,... Neves, J. P. (2013). The effect of equine chorionic gonadotropin on follicular size, luteal volume, circulating progesterone concentrations, and pregnancy rates in anestrous beef cows treated with a novel fixed-time artificial insemination protocol. Theriogenology, 79(8), 1204-1209. doi: 10.1016/j.theriogenology. 2013.02.019
Anjos, D. S. dos, Vital, A. F., Lainetti, P. F., Leis, A. F., F., Dalmolin, F., Elias, F., Fonseca-Alves, C. E. (2019). Deregulation of VEGFR-2 and PDGFR expression and microvascular density in a triple-negative model of canine malignant mammary tumors with lymph node or lung metastasis. Veterinary Science, 6(1), 1-12. doi: 10.3390/vetsci6010003
Araujo, R. R., Ginther, O. J., Ferreira, J. C., Palhão, M. M., Beg, M. A., & Wiltbank, M. C. (2009). Role of follicular estradiol-17beta in timing of luteolysis in heifers. Biology of Reproduction, 81(2), 426-437. doi: 10.1095/biolreprod.108.073825
Arsoy, D., & Sağmanlıgil, V. (2018). Reproductive cycles in white Karaman ewes: comparison of ovarian hormone secretion and reproductive behavior in non-pregnant and pregnant ewes in semi-intensive conditions. Acta Scientiarum. Animal Sciences, 40(1), 1-7. doi: 10.4025/actascianimsci.v40i1.39908
Bartlewski, P. M., Baby, T. E., & Giffin, J. L. (2011). Reproductive cycles in sheep. Animal Reproduction Science, 124(3-4), 259-268. doi: 10.1016/j.anireprosci.2011.02.024
Bartlewski, P. M., Beard, A. P., Cook, S. J., Chandolia, R. K, Honaramooz, A., & Rawlings, N. C. (1999). Ovarian antral follicular dynamics and their relationships with endocrine variables throughout the oestrous cycle in breeds of sheep differing in prolificacy. Journal of Reproduction and Fertility, 115(1), 111-124. doi: 10.1530/jrf.0.1150111
Bazer, F. W. (2013). Pregnancy recognition signaling mechanisms in ruminants and pigs. Journal of Animal Science and Biotechnology, 4(1), 1-10. doi: 10.1186/2049-1891-4-23
Bazer, F. W., Spencer, T. E., & Ott, T. L. (1997). Interferon tau: a novel pregnancy recognition signal. American Journal of Reproductive Immunology, 37(6), 412-20. doi: 10.1111/j.1600-0897.1997.tb0025 3.x
Bragança, G. M., Batista, R. I. T. P., Souza-Fabjan, J. M. G., Alfradique, V. A. P., Arashiro, E. K. N., Pinto, P. H. N.,… Brandão, F. Z. (2021). Exogenous progestogens differentially alter gene expression of immature cumulus-oocyte complexes in sheep. Domestic Animal Endocrinology, 74, 106518. doi: 10.1016/j.domaniend.2020.106518
Brooks, K., & Spencer, T. (2015). Biological roles of interferon tau (IFNT) and type I IFN receptors in elongation of the ovine conceptus. Biology of Reproduction, 92(2), 1-10. doi: 1095/biolreprod.114.1241 56
Cosentino, I. O., Balaro, M. F. A., Arashiro, E. K. N., Santos, J. D. R., Carvalho, A. B. S., Clariget, R. P.,… Brandão, F. Z. (2019). Hormonal protocols for early resynchronization of ovulation in ewes: The use of progestagens, eCG, and inclusion of early pregnancy diagnosis with color Doppler ultrasound. Theriogenology, 133(15), 113-118. doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.04.033
Gao, X., Zhang Q., Zhu, M., Li, X., Guo, Y., Pang, J.,… Wang, F. (2019). Effects of l-arginine on endometrial estrogen receptor α/β and progesterone receptor expression in nutrient-restricted sheep. Theriogenology, 138(15), 137-144. doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.07.018
García-Palencia, P., Sánchez, M. A., Nieto, A., Vilar, M. P., González, M., Veiga-Lopez, A.,… Flores, J. M. (2007). Sex steroid receptor expression in the oviduct and uterus of sheep with estrus synchronized with progestagen or prostaglandin analogues. Animal Reproduction Science, 97(1-2), 25-35. doi: 10.1016/j. anireprosci.2006.01.001
Garoussi, M. T., Mavadati, O., Bahonar, M., & Ragh, M. J. (2020). The effect of medroxyprogesterone acetate with or without eCG on conception rate of fat-tail ewes in out of breeding season. Tropical Animal Health and Production, 52(4), 1617-1622. doi: 10.1007/s11250-019-02159-8
Gonzalez-Bulnes, A., Menchaca, A., Martin, G. B., & Martinez-Ros, P. (2020). Seventy years of progestagen treatments for management of the sheep oestrous cycle: where we are and where we should go. Reproduction, Fertility and Development, 32(5), 441-452. doi: 10.1071/RD18477
Letelier, C. A., Contreras-Solisa, I., García-Fernández, R. A., Sánchez, M. A., García-Palencia, P., Sánchez, B., Gonzalez-Bulnes, A. (2011). Effects of oestrus induction with progestagens or prostaglandin analogues on ovarian and pituitary function in sheep. Animal Reproduction Science, 126(1-2), 61-69. doi: 10.1016/j.anireprosci.2011.04.012
Livak, K. J., & Schmittgen, T. D. (2001). Analysis of relative gene expression data using real time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) method. Methods, 25(4), 402-408. doi: 10.1006/meth. 2001.1262
Ma, W., Song, H., Das, S. K., Paria, B. C., & Dey, S. K. (2003). Estrogen is a critical determinant that specifies the duration of the window of uterine receptivity for implantation. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100(5), 2963-2968. doi: 10.1073/pnas.0530162100
Martinez-Ros, P., & Gonzalez-Bulnes, A. (2019). Efficiency of CIDR-based protocols including GnRH instead of eCG for estrus synchronization in sheep. Animals, 9(4), 1-11. doi: 10.3390/ani9040146
Martinez-Ros, P., Rios-Abellan, A., & Gonzalez-Bulnes, A. (2019). Influence of progesterone-treatment length and eCG administration on appearance of estrous behavior, ovulatory success and fertility in sheep. Animals, 9(1), 1-9. doi: 10.3390/ani9010009
Nakafeero, A., Hassen, A., & Lehloenya, K. C. (2020). Investigation of ram effect and eCG usage in progesterone based oestrous synchronization protocols on fertility of ewes following fixed time artificial insemination. Small Ruminant Research, 183, 106034. doi: 10.1016/j.smallrumres.2019.106034
Okumu, L. A., Forde, N., Fahey, A. G., Fitzpatrick, E., Roche, J. F., Crowe, M. A., & Lonergan, P. (2010). The effect of elevated progesterone and pregnancy status on mRNA expression and localisation of progesterone and oestrogen receptors in the bovine uterus. Reproduction, 140(1), 143-153. doi: 10.15 30/REP-10-0113
Robertshaw, I., Blan, F., & Das, S. K. (2016). Mechanisms of uterine estrogen signaling during early pregnancy in mice: an update Journal of Molecular Endocrinology, 56(3), 127-138. doi: 10.1530/JME-15-0300
Rosasco, S. L., Beard, J. K., Hallford, D. M., & Summers, A. F. (2019). Evaluation of estrous synchronization protocols on ewe reproductive efficiency and profitability. Animal Reproduction Science, 210, 106191. doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.106191
Rosenfeld, C. S., Han, C., Alexenko, A. P., Spencer, T. E., & Roberts, R. M. (2002). Expression of interferon receptor subunits, IFNAR1 and IFNAR2, in the ovine uterus. Biology of Reproduction, 67(3), 847-853. doi: 10.1095/biolreprod.102.004267
Rostami, B., Hajizadeh, R., Shahir, M. H., & Aliyari, D. (2017). The effect of post-mating hCG or progesterone administration on reproductive performance of Afshari × Booroola-Merino crossbred ewes. Tropical Animal Health and Production, 49(2), 245-250. doi: 10.1007/s11250-016-1183-6
Ruiz-González, I., Sánchez, M. A., García-Fernández, R. A., García-Palencia, P., Sánchez, B., Letelier, C. A., Flores, J. M. (2011). Endometrial expression of IFNAR-1 and oxytocin receptor (OTR) is not improved by prostaglandin analogues when compared to progestagens in ewes. Reproduction in Domestic Animals, 47(2), 274-280. doi: 10.1111/j.1439-0531.2011.01852.x
Ruiz-González, I., Sánchez M. A., García-Palencia P., Sánchez B., García-Fernández, R. A., González-Bulnes A., & Flores, J. M. (2012). Differences in uterine immunoexpression of PR, ERα and OTR when comparing prostaglandin- to progestagen-based protocols for ovine estrus synchronization. Animal Reproduction Science, 133(1), 93-100. doi: 10.1016/j.anireprosci.2012.06.015
Swelum, A. A., Alowaimer, A. N., & Abouheif, M. A. (2015). Use of fluorogestone acetate sponges or controlled internal drug release for estrus synchronization in ewes: effects of hormonal profiles and reproductive performance. Theriogenology, 84(4), 498-503. doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.03.018
Takahashi, H., Haneda, S., Kayano, M., & Matsui, M. (2016). Differences in progesterone concentrations and mRNA expressions of progesterone receptors in bovine endometrial tissue between the uterine horns ipsilateral and contralateral to the corpus luteum. Journal of Veterinary Medical Science, 78(4), 613-618. doi: 10.1292/jvms.15-0366
Tortorella, R. D., Ferreira, R., Santos, J. T., Andrade, O. S., Neto, Barreta, M. H., Oliveira, J. F.,... Neves, J. P. (2013). The effect of equine chorionic gonadotropin on follicular size, luteal volume, circulating progesterone concentrations, and pregnancy rates in anestrous beef cows treated with a novel fixed-time artificial insemination protocol. Theriogenology, 79(8), 1204-1209. doi: 10.1016/j.theriogenology. 2013.02.019
Downloads
Publicado
2021-08-12
Como Citar
Lima, J. de S., Costa, M. da S., Pereira Júnior, J. R., Ferreira, G. J. B. de C., Faustino, L. R., Alves, C. E. F., … Silva, C. M. G. da. (2021). Análise comparativa da produção de hormônios e perfis de expressão gênica em tecido uterino ovino durante o ciclo estral sincronizado usando acetato de medroxiprogesterona mais eCG e análogo de prostaglandina. Semina: Ciências Agrárias, 42(6), 3321–3336. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2021v42n6p3321
Edição
Seção
Artigos
Licença
Copyright (c) 2021 Semina: Ciências Agrárias
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Semina: Ciências Agrárias adota para suas publicações a licença CC-BY-NC, sendo os direitos autorais do autor, em casos de republicação recomendamos aos autores a indicação de primeira publicação nesta revista.
Esta licença permite copiar e redistribuir o material em qualquer meio ou formato, remixar, transformar e desenvolver o material, desde que não seja para fins comerciais. E deve-se atribuir o devido crédito ao criador.
As opiniões emitidas pelos autores dos artigos são de sua exclusiva responsabilidade.
A revista se reserva o direito de efetuar, nos originais, alterações de ordem normativa, ortográfica e gramatical, com vistas a manter o padrão culto da língua e a credibilidade do veículo. Respeitará, no entanto, o estilo de escrever dos autores. Alterações, correções ou sugestões de ordem conceitual serão encaminhadas aos autores, quando necessário.
