Sêmen equino refrigerado com diluidor quimicamente definido contendo lecitina de soja
DOI:
https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n6p2743Palavras-chave:
Criopreservação, Espermatozoides, Fosfatidilcolina de soja, Leite desnatado, Garanhão.Resumo
O sêmen equino tem sido historicamente refrigerado usando meios à base de leite. No entanto, o uso de componentes de origem animal causa várias preocupações potenciais, como variabilidade nas formulações, contaminação microbiana e questões regulatórias. Objetivou-se avaliar o potencial de inclusão de diferentes concentrações de lecitina de soja (LS) no meio quimicamente definido BWW - Biggers, Whitten e Whittingham para refrigeração de sêmen equino e armazenamento na temperatura de 15°C. Os ejaculados foram diluídos em seis diferentes grupos experimentais: 1) BotuSêmen® (controle); 2) BWW; 3) BWW + 1% lecitina de soja (LS); 4) BWW + 2% LS; 5) BWW + 4% LS e 6) BWW + 6% LS. O meio BWW, não preservou a motilidade, a velocidade, a retilinearidade (STR), a linearidade (LIN), a amplitude do deslocamento lateral da cabeça (ALH), a frequência de batimento flagelar cruzado (BCF), a integridade funcional e estrutural dos espermatozoides equino durante 24 h de refrigeração quando comparado ao BotuSêmen® (P <0,05). O uso de BWW para refrigeração de sêmen equino só foi possível com adição de lecitina de soja, sendo as concentrações igual ou superior a 2% melhores, pois preservaram a motilidade total, a velocidade curvilinear (VCL) e LIN com mesmo potencial do BotuSêmen® (P >0,05). Ainda assim, o diluidor comercial BotuSêmen® apresentou superioridade em preservar o percentual de espermatozoides progressivamente móveis, a velocidade média da trajetória (VAP), a velocidade linear progressiva (VSL) e a frequência do batimento flagelar cruzado (BCF) durante a refrigeração comparado aos demais diluidores (P <0,05). A inclusão de lecitina de soja, de 2 a 6% no meio BWW, permitiu a manutenção da viabilidade do sêmen equino refrigerado a 15ºC por até 24 horas.
Métricas
Referências
Akhter, S., Ansari, M. S., Rakha, B. A., Ullah, N., Andrabi, S. M., & Khalid, M. (2011). In vitro evaluation of liquid stored buffalo semen at 5c diluted in soya lecithin-based extender (Bioxcell), tris-citric egg yolk, skim-milk and egg yolk-citrate extenders. Reproduction in Domestic Animals, 46(1), 45-49. doi: 10.1111/j.1439-0531.2009.01561.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2009.01561.x
Alamaary, M., Haron, A. W., Ali, M., Hiew, M., Adamu, L., & Peter, I. (2019). Effects of four extenders on the quality of frozen semen in Arabian stallions. Veterinary World, 12(1), 34-40. doi: 10.14202/vetworld.2019.34-40 DOI: https://doi.org/10.14202/vetworld.2019.34-40
Ashaolu, T. J. (2020). Applications of soy protein hydrolysates in the emerging functional foods: a review. International Journal of Food Science & Technology, 55(2), 421-428. doi: 10.1111/ijfs.14380 DOI: https://doi.org/10.1111/ijfs.14380
Aurich, C., Seeber, P., & Müller-Schlösser, F. (2007). Comparison of different extenders with defined protein composition for storage of stallion spermatozoa at 5 degrees C. Reproduction in Domestic Animals, 42(4), 445-448. doi: 10.1111/j.1439-0531.2006.00828.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2006.00828.x
Biggers, J. D., Whitten, W. K., & Whittingham, D. G. (1971). The culture of mouse embryos in vitro. In J. C. Daniels (Ed.), Methods in mammalian embryology (pp. 86-116). San Francisco, CA: Freeman.
Bousseau, S., Brillard, J. P., Marquan-Le Guienne, B., Guerin, B., Camus, A., & Lechat, M. (1998). Comparison of bacteriological qualities of various egg yolk sources and the in vitro and in vivo fertilizing potential of bovine semen frozen in egg yolk or lecithin-based diluents. Theriogenology, 50(5), 699-706. doi: 10.1016/s0093-691x(98)00175-7 DOI: https://doi.org/10.1016/S0093-691X(98)00175-7
Brasileiro, L. S., Segabinazzi, L. G. T. M., Menezes, E., Salgueiro, C. C., Novello, G., Scheeren, V. F. D. C., Alvarenga, M. A., & Nunes, J. F. (2019). Coconut water as an extender component for cooled equine sperm. Journal of Equine Veterinary Science, 78(1), 69-73. doi: 10.1016/j.jevs.2019.03.213 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jevs.2019.03.213
Caldevilla, M., Ferrante, A., & Neild, D. (2020). Utilización de un medio con lecitina de soja para congelar semen equino. InVet, 22(1), 41-49.
Campos, G. A., Garcia, V. F. C., Freitas-Dell’Aqua, C. P., Segabinazzi, L. G. T. M., Maciel, L. F. S., Alvarenga, M. A., Papa, F. O., & Dell’Aqua, J. A. (2020). Sodium caseinate and cholesterol improve bad cooler stallion fertility. Journal of Equine Veterinary Science, 93(1), 103201. doi: 10.1016/j.jevs.2020.103201 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jevs.2020.103201
Brazilian College of Animal Reproduction (2013). Manual de exame andrológico e avaliação de sêmen animal (3a ed.). BCAR.
Dalmazzo, A., Angrimani, D. S. R., Losano, J. D. A., Rocha, C. C., Sobrinho, C. A. B., Gurgel, J. R. C., Pacheco, P. I. M., Minazaki, C. K., Crusco, S. E., Nichi, M., & Barnabe, V. H. (2019). Insights into soy lecithin and egg yolk-based extenders for chilling canine spermatozoa. Zygote, 27(1), 17-24. doi: 10.1017/S0967199418000576 DOI: https://doi.org/10.1017/S0967199418000576
De Paz, P., Esteso, M. C., Alvarez, M., Mata, M., Chamorro, C. A., & Anel, L. (2010). Development of extender based on soybean lecithin for its application in liquid ram semen. Theriogenology, 74(4), 663-671. doi: 10.1016/j.theriogenology.2010.03.022 DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.03.022
Deng, L. (2021). Current progress in the utilization of soy-based emulsifiers in food applications-a review. Foods, 10(6), 1354. doi: 10.3390/foods10061354 DOI: https://doi.org/10.3390/foods10061354
Florez-Rodriguez, S. A., Arruda, R. P., Alves, M., Affonso, F. J., Carvalho, H. F., Lemes, K. M., Lançoni, R., Andrade, A. F., & Celeghini, E. (2014). Morpho functional characterization of cooled sperm with different extenders to use in equine-assisted reproduction. Journal of Equine Veterinary Science, 34(7), 911-917. doi: 10.1016/j.jevs.2014.04.007 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jevs.2014.04.007
Forouzanfar, M., Sharafi, M., Hosseini, S. M., Ostadhosseini, S., Hajian, M., Hosseini, L., Abedi, P., Nili, N., Rahmani, H. R., & Nasr-Esfahani, M. H. (2010). In vitro comparison of egg yolk-based and soybean lecithin-based extenders for cryopreservation of ram semen. Theriogenology, 73(4), 480-487. doi: 10.1016/j.theriogenology.2009.10.005 DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2009.10.005
Gibb, Z., Lambourne, S. R., Quadrelli, J., Smith, N. D., & Aitken, R. J. (2015). L-carnitine and pyruvate are prosurvival factors during the storage of stallion spermatozoa at room temperature. Biology of Reproduction, 93(4), 104. doi: 10.1095/biolreprod.115.131326 DOI: https://doi.org/10.1095/biolreprod.115.131326
Harrison, R. A., & Vickers, S. E. (1990). Use of fluorescent probes to assess membrane integrity in mammalian spermatozoa. Journal of Reproduction and Fertility, 88(1), 343-352. doi: 10.1530/jrf.0.0880343 DOI: https://doi.org/10.1530/jrf.0.0880343
John, J. V., Park, H., Lee, H. R., Suh, H., & Kim, I. (2015). Simultaneous extraction of phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine from soybean lecithin. European Journal of Lipid Science and Technology, 117(10), 1647-1654. doi: 10.1002/ejlt.201400396 DOI: https://doi.org/10.1002/ejlt.201400396
Judde, A., Villeneuve, P., Rossignol-Castera, A., & Guillou, A. L. (2003). Antioxidant effect of soy lecithins on vegetable oil stability and their synergism with tocopherols. Journal of the American Oil Chemists' Society, 80(12), 1209-1215. doi: 10.1007/s11746-003-0844-4 DOI: https://doi.org/10.1007/s11746-003-0844-4
Melo, M. I. V., & Henry, M. (1999). Teste hiposmótico na avaliação de sêmen equino. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 51(1), 71-78. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-09351999000600009
Mousavi, S. M., Towhidi, A., Zhandi, M., Amoabedin, G., Mohammadi-Sangcheshmeh, A., Sharafi, M., & Hussaini, S. M. H. (2019). Comparison of two different antioxidants in a nano lecithin-based extender for bull sperm cryopreservation. Animal Reproduction Science, 209(1), 106171. doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.106171 DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2019.106171
Mozafari, M. R. (2010). Nanoliposomes: preparation and analysis. Methods in Molecular Biology, 605(1), 29-50. doi: 10.1007 / 978-1-60327-360-2_2 DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-60327-360-2_2
Murphy, C., English, A. M., Holden, A. S., & Fair, S. (2014). Cholesterol-loaded-cyclodextrins improve the post-thaw quality of stallion sperm. Animal Reproduction Science, 145(3-4), 123-129. doi: 10.1016/j.anireprosci.2014.01.013 DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2014.01.013
Nadri, T., Towhidi, A., Zeinoaldini, S., Martínez-Pastor, F., Mousavi, M., Noei, R., Tar, M., & Sangcheshmeh, A. M. (2019). Lecithin nanoparticles enhance the cryosurvival of caprine sperm. Theriogenology, 133(1), 38-44. doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.04.024 DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2019.04.024
Naves, C. S., Beletti, M. E., Duarte, M. B., & Vieira, R. C. (2004). Avaliação da cromatina espermática em equinos com azul de toluidina e acridine orange. Bioscience Journal, 20(3), 117-124.
Nguyen, V. V., Ponchunchoovong, S., Kupittayanant, S., & Kupittayanant, P. (2019). Effects of egg yolk and soybean lecithin on sperm quality determined by computer-assisted sperm analysis and confocal laser scanning microscope in chilled canine sperm. Veterinary Medicine and Science, 5(3), 345-360. doi: 10.1002/vms3.158 DOI: https://doi.org/10.1002/vms3.158
Nouri, H., Towwhidi, A., Zhandi, M., & Sadeghi, R. (2013). The effects of centrifuged egg yolk used with INRA plues soybean lecithin extender on semen quality to freeze Caspian horse semen. Journal of Equine Veterinary Science, 33(12), 1050-1053. doi: 10.1016/j.jevs.2013.03.184 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jevs.2013.03.184
Novello, G., Podico, G., Segabinazzi, L. G. T. M., Lima, S. F., & Canisso, I. F. (2020). Stallion semen cooling using native phosphocaseinate-based extender and sodium caseinate cholesterol-loaded cyclodextrin-based extender. Journal of Equine Veterinary Science, 92(1), 103104 doi: 10.1016/j.jevs.2020.103104 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jevs.2020.103104
Oliveira, G. C., Oliveira, B. M. M., Celeghini, E. C. C., Fernandes, C. B., & Mattos, C. B. (2013). Criopreservação do sêmen equino: uma revisão. Revista Brasileira de Reprodução Animal, 37(1), 23-28.
Papa, F. O., Felício, G. B., Melo-Oña, C. M., Alvarenga, M. A., De Vita, B., Trinque, C., Puoli, J. N., Fº., & Dell'Aqua, J. A., Jr. (2011). Replacing egg yolk with soybean lecithin in the cryopreservation of stallion semen. Animal Reproduction Science, 129(1-2), 73-77. doi: 10.1016/j.anireprosci.2011.10.006 DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2011.10.006
Plante, G., Lusignan, M. F., Lafleur, M., & Manjunath, P. (2015). Interaction of milk proteins and Binder of Sperm (BSP) proteins from boar, stallion and ram semen. Reproductive Biology and Endocrinology, 13(1), 92-112. doi: 10.1186/s12958-015-0093-1 DOI: https://doi.org/10.1186/s12958-015-0093-1
Ricker, J. V., Linfor, J. J., Delfino, W. J., Kysar, P., Scholtz, E. L., Tablin, F., Crowe, J. H., Ball, B. A., & Meyers, S. A. (2006). Equine sperm membrane phase behavior: the effects of lipid-based cryoprotectants. Biology of Reproduction, 74(2), 359-365. doi: 10.1095/biolreprod.105.046185 DOI: https://doi.org/10.1095/biolreprod.105.046185
Sorrenti, G., Bagnoli, A., Miraglia, V., Crocetta, F., Vitiello, V., Ristoratore, F., Cirino, P., Sansone, G., & Sordino, P. (2014). Investigating sperm cryopreservation in a model tunicate, Ciona intestinalis sp. A. Cryobiology, 68(1), 43-49. doi: 10.1016/j.cryobiol.2013.11.005 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2013.11.005
Sun, L., He, M., Wu, C., Zhang, S., Dai, J., & Zhang, D. (2021). Beneficial influence of soybean lecithin nanoparticles on rooster frozen-thawed semen quality and fertility. Animals, 1(6), 1-12. doi: 10.3390/ani11061769 DOI: https://doi.org/10.3390/ani11061769
Swegen, A., Lambourne, S. R., Aitken, R. J., & Gibb, Z. (2016). Rosiglitazone improves stallion sperm motility, ATP content, and mitochondrial function. Biology of Reproduction, 95(5), 107, 1-12. doi: 10.1095/biolreprod.116.142687 DOI: https://doi.org/10.1095/biolreprod.116.142687
Vidament, M., Dupere, A. M., Julienne, P., Evain, A., Noue, P., & Palmer, E. (1997). Equine frozen semen: freezability and fertility field results. Theriogenology, 48(6), 907-917. doi: 10.1016/s0093-691x(97)00319 DOI: https://doi.org/10.1016/S0093-691X(97)00319-1
Wang, G., & Wang, T. (2008). Oxidative stability of egg and soy lecithin as affected by transition metal ions and pH in emulsion. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 56(23), 11424-11431. doi: 10.1021/jf8022832 DOI: https://doi.org/10.1021/jf8022832
Watson, P. F., & Morris, G. J. (1987). Cold shock injury in animal cells. Symposia of the Society for Experimental Biology, 41(1), 311-340.
Zhao, J. Q., Xiao, G. L., Zhu, W. L., Fang, D., Li, N., Han, C. M., & Gao, Q. H. (2021). Ram semen preserved at 0 °C with soybean lecithin Tris-based extender substituted for egg yolk. Animal Bioscience, 34(2), 192-197. doi: 10.5713/ajas.20.0118 DOI: https://doi.org/10.5713/ajas.20.0118
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2023 Semina: Ciências Agrárias
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Os Direitos Autorais para artigos publicados são de direito da revista. Em virtude da aparecerem nesta revista de acesso público, os artigos são de uso gratuito, com atribuições próprias, em aplicações educacionais e não-comerciais.
A revista se reserva o direito de efetuar, nos originais, alterações de ordem normativa, ortográfica e gramatical, com vistas a manter o padrão culto da língua e a credibilidade do veículo. Respeitará, no entanto, o estilo de escrever dos autores.
Alterações, correções ou sugestões de ordem conceitual serão encaminhadas aos autores, quando necessário. Nesses casos, os artigos, depois de adequados, deverão ser submetidos a nova apreciação.
As opiniões emitidas pelos autores dos artigos são de sua exclusiva responsabilidade.
