Mudanças bioquímicas em plantas de aveia preta em resposta ao déficit hídrico sob diferentes temperaturas
DOI:
https://doi.org/10.5433/1679-0359.2021v42n5p2685Palavras-chave:
Avena strigosa Schreb, Enzimas antioxidantes, Catalase, Ascorbato peroxidase, Malondialdeído.Resumo
A aveia-preta (Avena strigosa Schreb.) destaca-se como uma forragem de grande importância na agricultura brasileira. Porém, a produtividade e a qualidade dessa forragem podem ser afetadas por fatores abióticos, como temperatura e disponibilidade de água, que afetam os processos fisiológicos e facilitam o acúmulo de radicais livres (espécies reativas de oxigênio - ROS). Assim, o objetivo deste estudo foi compreender as alterações bioquímicas em plantas de aveia preta submetidas ao déficit hídrico em diferentes temperaturas. Os experimentos foram conduzidos em casa de vegetação em dois períodos experimentais, os quais apresentaram temperatura média de 20 °C e 24 °C, respectivamente. Sementes de aveia preta, variedade IAPAR 61, foram semeadas em vasos e as plantas irrigadas por 60 dias. Depois disso, os vasos foram cobertos com sacos plásticos e a irrigação foi suspensa. As análises foram realizadas em cinco períodos de avaliação - M1: plantas antes da suspensão da irrigação, M2: plantas no primeiro ponto de murcha, M3: três dias após a retirada do plástico e retorno da irrigação, M4: quatro dias após M3 e antes do segundo suspensão da irrigação e M5: o segundo ponto de murcha. Foram analisados os níveis de proteína total e malondialdeído (MDA) e a atividade das enzimas catalase (CAT) e ascorbato peroxidase (APX). O delineamento experimental foi inteiramente casualizado, com seis repetições, em esquema fatorial temperatura média × manejo da água × períodos de avaliação, e as médias foram comparadas pelo teste de Tukey a 5%. Em resposta à deficiência hídrica e ao aumento da temperatura, as plantas de aveia preta aumentaram seus níveis de proteínas solúveis totais e houve maior peroxidação lipídica devido ao aumento do teor de malondialdeído. Não houve alteração na atividade das enzimas catalase e ascorbato peroxidase sob déficit hídrico, sendo que essas atividades diminuíram com o aumento da temperatura.Downloads
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Referências
Alves, G., Rodrigues, M., Pereira, J. W. D., Luz, L. N. D., Lima, L., & Santos, R. C. D. (2016). Genotypic variability of peanut lines in response to water stress, based on biochemical descriptors. Revista Caatinga, 29(3), 528-536. doi: 10.1590/1983-21252016v29n302rc
Anjum, S. A., Ashraf, U., Tanveer, M., Khan, I., Hussain, S., Shahzad, B.,… Wang, L. C. (2017). Drought induced changes in growth, osmolyte accumulation and antioxidant metabolism of three maize hybrids. Frontiers in Plant Science, 8(69), 1-12. doi: 10.3389/fpls.2017.00069
Araújo, G. D. N., Jr., Gomes, F. T., Silva, M. J. da, Rosa Jardim, A. M. F. da, Simões, V. J. L. P., Izidro, J. L. P. S.,... Silva, T. G. F. da. (2019). Estresse hídrico em plantas forrageiras: uma revisão. Pubvet, 13(1), 1-10. doi: 10.31533/pubvet.v13n01a241.1-10
Atkinson, N. J., & Urwin, P. E. (2012). The interaction of plant biotic and abiotic stresses: from genes to the field. Journal of Experimental Botany, 63(10), 3523-3543. doi: 10.1093/jxb/ers100
Avramova, V., Nagel, K. A., Abdelgawad, H., Bustos, D., Duplessis, M., Fiorani, F., & Beemster, G. T. (2016). Screening for drought tolerance of maize hybrids by multi-scale analysis of root and shoot traits at the seedling stage. Journal of Experimental Botany, 67(8), 2453-2466. doi: 10.1093/jxb/erw055
Barbosa, M. R., Silva, M. M. A., Willadino, L., Ulisses, C., & Camara, T. R. (2014). Plant generation and enzymatic detoxification of reactive oxygen species. Ciência Rural, 44(3), 453-460. doi: 10.1590/S0103 -84782014000300011
Bianchi, L., Germino, G. H., & Silva, M. A. (2016). Adaptação das plantas ao déficit hídrico. Acta Iguazu, 5(4), 15-32. doi: 10.48075/actaiguaz.v5i4.16006
Bita, C., & Gerats, T. (2013). Plant tolerance to high temperature in a changing environment: scientific fundamentals and production of heat stress-tolerant crops. Frontiers in Plant Science, 4(273), 1-18. doi: 10.3389/fpls.2013.00273
Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1/2), 248-254. doi: 10.1016/0 003-2697(76)90527-3
Carvalho, C. G. P., Ozawa, E. K. M., Amabile, R. F., Godinho, V., Gonçalves, S. L., Ribeiro, J. L., & Seifert, A. L. (2015). Adaptabilidade e estabilidade de genótipos de girassol resistentes a imidazolinonas em cultivos de segunda safra. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, 10(1), 1-7. doi: 10.5039/agraria. v10i1a3804
Caverzan, A., Passaia, G., Rosa, S. B., Ribeiro, C. W., Lazzarotto, F., & Margis-Pinheiro, M. (2012). Plant responses to stresses: role of ascorbate peroxidase in the antioxidant protection. Genetics and Molecular Biology, 35(4), 1011-1019. doi: 10.1590/s1415-47572012000600016.
Coelho, C. C. R., Neves, M. G., Oliveira, L. M., Conceição, A. G. C., Okumura, R. S., & Oliveira, C. F., Neto. (2013). Biometria em plantas de milho submetidas ao alagamento. Revista Agroecossistemas, 5(1), 32-38. doi: 10.18542/ragros.v5i1.1408
Golldack, D., Li, C., Mohan, H., & Probst, N. (2014). Tolerance to drought and salt stress in plants: unraveling the signaling networks. Frontiers in Plant Science, 5(151), 1-10. doi: 10.3389/fpls.2014.001 51
Habermann, E., Dias de Oliveira, E. A., Contin, D. R., Delvecchio, G., Viciedo, D. O., Moraes, M. A. de,... Martinez, C. A. (2019). Warming and water deficit impact leaf photosynthesis and decrease forage quality and digestibility of a C4 tropical grass. Physiologia Plantarum, 165(2), 383-402. doi: 10.1111/ ppl.12891
Hasheminasab, H., Assad, M. T., Aliakbari, A., & Sahhafi, S. R. (2012). Influence of drought stress on oxidative damage and antioxidant defense systems in tolerant and susceptible wheat genotypes. Journal of Agricultural Science, 4(8), 20-30. doi: 10.5539/jas.v4n8p20
Heath, R. L., & Packer, L. (1968). Photoperoxidation in isolated chloroplasts: I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics, 125(1), 189-198. doi: 10.1016/000 3-9861(68)90654-1
Hendges, F. B., Rambo, C. R., Alcassa, L. P., Liebl, J., Vendruscolo, E. C. G., & Costa, A. (2015). Avaliação enzimática e fisiológica de plântulas de milho submetidas à seca. Revista Brasileira de Energias Renováveis, 4(2), 52-63. doi: 10.5380/rber.v4i2.42287
Hessini, K., Issaoui, K., Ferchichi, S., Saif, T., Abdelly, C., Siddique, K. H., & Cruz, C. (2019). Interactive effects of salinity and nitrogen forms on plant growth, photosynthesis and osmotic adjustment in maize. Plant Physiology and Biochemistry, 139, 171-178. doi: 10.1016/j.plaphy.2019.03.005
Islam, M. R., Xue, X., Mao, S., Ren, C., Eneji, A. E., & Hu, Y. (2011). Effects of water saving superabsorbent polymer on antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation in oat (Avena sativa L.) under drought stress. Journal of the Science of Food and Agriculture, 91(4), 680-686. doi: 10.1002/jsfa. 4234
Jiménez-Muñoz, J. C., Mattar, C., Barichivich, J., Santamaría-Artigas, A., Takahashi, K., Malhi, Y., & Van Der Schrier, G. (2016). Record-breaking warming and extreme drought in the Amazon rainforest during the course of El Niño 2015–2016. Scientific Reports, 6(1), 1-7. doi: 10.1038/srep33130
Khan, M. H., & Panda, S. K. (2008). Alterations in root lipid peroxidation and antioxidative responses in two rice cultivars under NaCl-salinity stress. Acta Physiologiae Plantarum, 30(1), 81-89. doi: 10.1007/s117 38-007-0093-7
Khan, Z., & Shahwar, D. (2020). Role of Heat Shock Proteins (HSPs) and heat stress tolerance in crop plants. In Sustainable agriculture in the era of climate change (pp. 211-234). Cham: Springer. doi: 10. 1007/978-3-030-45669-6
Kosar, F., Akram, N. A., Ashraf, M., Ahmad, A., Alyemeni, M. N., & Ahmad, P. (2020). Impact of exogenously applied trehalose on leaf biochemistry, achene yield and oil composition of sunflower under drought stress. Physiologia Plantarum, 172(2), 1-17. doi: 10.1111/ppl.13155
Koussevitzky, S., Suzuki, N., Huntington, S., Armijo, L., Sha, W., Cortes, D.,… Mittler, R. (2008). Ascorbate peroxidase 1 plays a key role in the response of Arabidopsis thaliana to stress combination. Journal of Biological Chemistry, 283(49), 34197-34203. doi: 10.1074/jbc.M806337200
Mafakheri, A., Siosemardeh, A., Bahramnejad, B., Struik, P. C., & Sohrabi, Y. (2011). Effect of drought stress and subsequent recovery on protein, carbohydrate contents, catalase and peroxidase activities in three chickpea ('Cicer arietinum') cultivars. Australian Journal of Crop Science, 5(10), 1255-1260. doi: 10.3316/informit.746357591676684.
Manetti, J., Fº., Oliveira, C. M. G., Caramori, P. H., Nagashima, G. T., & Hernandez, F. B. T. (2018). Cold tolerance of forage plant species. Semina: Ciências Agrárias, 39(4), 1469-1476. doi: 10.5433/1679-035 9.2018v39n4p1469
Marín de la Rosa, N., Lin, C. W., Kang, Y. J., Dhondt, S., Gonzalez, N., Inzé, D., & Falter Braun, P. (2019). Drought resistance is mediated by divergent strategies in closely related Brassicaceae. New Phytologist, 223(2), 783-797. doi: 10.1111/nph.15841
Meena, Y. K., & Kaur, N. (2019). Towards an understanding of physiological and biochemical mechanisms of drought tolerance in plant. Annual Research & Review in Biology, 31(2), 1-13. doi: 10.9734/ARRB/ 2019/v31i230042
Nemati, M., Piro, A., Norouzi, M., Vahed, M. M., Nisticò, D. M., & Mazzuca, S. (2019). Comparative physiological and leaf proteomic analyses revealed the tolerant and sensitive traits to drought stress in two wheat parental lines and their F6 progenies. Environmental and Experimental Botany, 158, 223-237. doi: 10.1016/j.envexpbot.2018.10.024
Nunes, F. H., Jr., Freitas, V. S., Mesquita, R. O., Braga, B. B., Barbosa, R. M., Martins, K., & Gondim, F. A. (2017). Effects of supplement with sanitary landfill leachate in gas exchange of sunflower (Helianthus annuus L.) seedlings under drought stress. Environmental Science and Pollution Research, 24(30), 24002-24010. doi: 10.1007/s11356-017-0047-6
Nxele, X., Klein, A., & Ndimba, B. K. (2017). Drought and salinity stress alters ROS accumulation, water retention, and osmolyte content in sorghum plants. South African Journal of Botany, 108, 261-266. doi: 10.1016/j.sajb.2016.11.003
Ozturk, M., Turkyilmaz Unal, B., García‐Caparrós, P., Khursheed, A., Gul, A., & Hasanuzzaman, M. (2020). Osmoregulation and its actions during the drought stress in plants. Physiologia Plantarum, Special Issue Article, 1-15. doi: 10.1111/ppl.13297
Peixoto, P. H. P., Cambraia, J., Sant’Anna, R., Mosquim, P. R., & Moreira, M. A. (1999). Aluminum effects on lipid peroxidation and activities of enzymes of oxidative metabolism in sorghum. Revista Brasileira de Fisiologia Vegetal, 11(3), 137-143. Recuperado de https://www.researchgate.net/profile/ Paulo_ Peixoto4/publication/267338431_ALUMINUM_EFFECTS_ON_LIPID_PEROXIDATION_AND_ON_THE_ACTIVITIES_OF_ENZYMES_OF_OXIDATIVE_METABOLISM_IN_SORGHUM/links/544db4960cf2d6347f45cb09.pdf
Pereira, J. W. D. L., Melo, P. D. A., Fº., Albuquerque, M. B., Nogueira, R. J. M. C., & Santos, R. C. (2012). Mudanças bioquímicas em genótipos de amendoim submetidos a déficit hídrico moderado. Revista Ciência Agronômica, 43(4), 766-773. doi: 10.1590/S1806-66902012000400019
Rizhsky, L., Liang, H., Shuman, J., Shulaev, V., Davletova, S., & Mittler, R. (2004). When defense pathways collide. The response of Arabidopsis to a combination of drought and heat stress. Plant Physiology, 134(4), 1683-1696. doi: 10.1104/pp.103.033431
Sousa, C., Pedrosa, E. M., Rolim, M. M., Oliveira, R. A. D., Fº., Souza, M. A. de, & Pereira, J. V. F. (2015). Crescimento e respostas enzimáticas do feijoeiro caupi sob estresse hídrico e nematoide de galhas. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, 19(2), 113-118. doi: 10.1590/1807-1929/ agriambi.v19n2p113-118
Stringari, J. D., Sacomori, W., Roters, D. F., Oliveira, G. F. de, & Almeida, J. (2019). O efeito da aplicação continuada de dejeto líquido suíno na produção de massa seca da aveia preta. Revista Agroecossistemas, 11(2), 73-81. doi: 10.18542/ragros.v11i2.7388
Tonato, F., Carneiro, B., Pedreira, C. G. S., & Pequeno, D. N. L. (2014). Aveia preta e azevém anual colhidos por interceptação de luz ou intervalo fixo de tempo em sistemas integrados de agricultura e pecuária no Estado de São Paulo. Ciência Rural, 44(1), 104-110. doi: 10.1590/S0103-84782014000100 017
Turner, N. C. (2018). Turgor maintenance by osmotic adjustment: 40 years of progress. Journal of Experimental Botany, 69(13), 3223-3233. doi: 10.1093/jxb/ery181
Wang, Z., Li, J., Lai, C., Wang, R. Y., Chen, X., & Lian, Y. (2018). Drying tendency dominating the global grain production area. Global Food Security, 16, 138-149. doi: 10.1016/j.gfs.2018.02.001
Yang, F., & Miao, L. F. (2010). Adaptive responses to progressive drought stress in two poplar species originating from different altitudes. Silva Fennica, 44(1), 23-37. doi: 10.14214/sf.160
Anjum, S. A., Ashraf, U., Tanveer, M., Khan, I., Hussain, S., Shahzad, B.,… Wang, L. C. (2017). Drought induced changes in growth, osmolyte accumulation and antioxidant metabolism of three maize hybrids. Frontiers in Plant Science, 8(69), 1-12. doi: 10.3389/fpls.2017.00069
Araújo, G. D. N., Jr., Gomes, F. T., Silva, M. J. da, Rosa Jardim, A. M. F. da, Simões, V. J. L. P., Izidro, J. L. P. S.,... Silva, T. G. F. da. (2019). Estresse hídrico em plantas forrageiras: uma revisão. Pubvet, 13(1), 1-10. doi: 10.31533/pubvet.v13n01a241.1-10
Atkinson, N. J., & Urwin, P. E. (2012). The interaction of plant biotic and abiotic stresses: from genes to the field. Journal of Experimental Botany, 63(10), 3523-3543. doi: 10.1093/jxb/ers100
Avramova, V., Nagel, K. A., Abdelgawad, H., Bustos, D., Duplessis, M., Fiorani, F., & Beemster, G. T. (2016). Screening for drought tolerance of maize hybrids by multi-scale analysis of root and shoot traits at the seedling stage. Journal of Experimental Botany, 67(8), 2453-2466. doi: 10.1093/jxb/erw055
Barbosa, M. R., Silva, M. M. A., Willadino, L., Ulisses, C., & Camara, T. R. (2014). Plant generation and enzymatic detoxification of reactive oxygen species. Ciência Rural, 44(3), 453-460. doi: 10.1590/S0103 -84782014000300011
Bianchi, L., Germino, G. H., & Silva, M. A. (2016). Adaptação das plantas ao déficit hídrico. Acta Iguazu, 5(4), 15-32. doi: 10.48075/actaiguaz.v5i4.16006
Bita, C., & Gerats, T. (2013). Plant tolerance to high temperature in a changing environment: scientific fundamentals and production of heat stress-tolerant crops. Frontiers in Plant Science, 4(273), 1-18. doi: 10.3389/fpls.2013.00273
Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1/2), 248-254. doi: 10.1016/0 003-2697(76)90527-3
Carvalho, C. G. P., Ozawa, E. K. M., Amabile, R. F., Godinho, V., Gonçalves, S. L., Ribeiro, J. L., & Seifert, A. L. (2015). Adaptabilidade e estabilidade de genótipos de girassol resistentes a imidazolinonas em cultivos de segunda safra. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, 10(1), 1-7. doi: 10.5039/agraria. v10i1a3804
Caverzan, A., Passaia, G., Rosa, S. B., Ribeiro, C. W., Lazzarotto, F., & Margis-Pinheiro, M. (2012). Plant responses to stresses: role of ascorbate peroxidase in the antioxidant protection. Genetics and Molecular Biology, 35(4), 1011-1019. doi: 10.1590/s1415-47572012000600016.
Coelho, C. C. R., Neves, M. G., Oliveira, L. M., Conceição, A. G. C., Okumura, R. S., & Oliveira, C. F., Neto. (2013). Biometria em plantas de milho submetidas ao alagamento. Revista Agroecossistemas, 5(1), 32-38. doi: 10.18542/ragros.v5i1.1408
Golldack, D., Li, C., Mohan, H., & Probst, N. (2014). Tolerance to drought and salt stress in plants: unraveling the signaling networks. Frontiers in Plant Science, 5(151), 1-10. doi: 10.3389/fpls.2014.001 51
Habermann, E., Dias de Oliveira, E. A., Contin, D. R., Delvecchio, G., Viciedo, D. O., Moraes, M. A. de,... Martinez, C. A. (2019). Warming and water deficit impact leaf photosynthesis and decrease forage quality and digestibility of a C4 tropical grass. Physiologia Plantarum, 165(2), 383-402. doi: 10.1111/ ppl.12891
Hasheminasab, H., Assad, M. T., Aliakbari, A., & Sahhafi, S. R. (2012). Influence of drought stress on oxidative damage and antioxidant defense systems in tolerant and susceptible wheat genotypes. Journal of Agricultural Science, 4(8), 20-30. doi: 10.5539/jas.v4n8p20
Heath, R. L., & Packer, L. (1968). Photoperoxidation in isolated chloroplasts: I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics, 125(1), 189-198. doi: 10.1016/000 3-9861(68)90654-1
Hendges, F. B., Rambo, C. R., Alcassa, L. P., Liebl, J., Vendruscolo, E. C. G., & Costa, A. (2015). Avaliação enzimática e fisiológica de plântulas de milho submetidas à seca. Revista Brasileira de Energias Renováveis, 4(2), 52-63. doi: 10.5380/rber.v4i2.42287
Hessini, K., Issaoui, K., Ferchichi, S., Saif, T., Abdelly, C., Siddique, K. H., & Cruz, C. (2019). Interactive effects of salinity and nitrogen forms on plant growth, photosynthesis and osmotic adjustment in maize. Plant Physiology and Biochemistry, 139, 171-178. doi: 10.1016/j.plaphy.2019.03.005
Islam, M. R., Xue, X., Mao, S., Ren, C., Eneji, A. E., & Hu, Y. (2011). Effects of water saving superabsorbent polymer on antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation in oat (Avena sativa L.) under drought stress. Journal of the Science of Food and Agriculture, 91(4), 680-686. doi: 10.1002/jsfa. 4234
Jiménez-Muñoz, J. C., Mattar, C., Barichivich, J., Santamaría-Artigas, A., Takahashi, K., Malhi, Y., & Van Der Schrier, G. (2016). Record-breaking warming and extreme drought in the Amazon rainforest during the course of El Niño 2015–2016. Scientific Reports, 6(1), 1-7. doi: 10.1038/srep33130
Khan, M. H., & Panda, S. K. (2008). Alterations in root lipid peroxidation and antioxidative responses in two rice cultivars under NaCl-salinity stress. Acta Physiologiae Plantarum, 30(1), 81-89. doi: 10.1007/s117 38-007-0093-7
Khan, Z., & Shahwar, D. (2020). Role of Heat Shock Proteins (HSPs) and heat stress tolerance in crop plants. In Sustainable agriculture in the era of climate change (pp. 211-234). Cham: Springer. doi: 10. 1007/978-3-030-45669-6
Kosar, F., Akram, N. A., Ashraf, M., Ahmad, A., Alyemeni, M. N., & Ahmad, P. (2020). Impact of exogenously applied trehalose on leaf biochemistry, achene yield and oil composition of sunflower under drought stress. Physiologia Plantarum, 172(2), 1-17. doi: 10.1111/ppl.13155
Koussevitzky, S., Suzuki, N., Huntington, S., Armijo, L., Sha, W., Cortes, D.,… Mittler, R. (2008). Ascorbate peroxidase 1 plays a key role in the response of Arabidopsis thaliana to stress combination. Journal of Biological Chemistry, 283(49), 34197-34203. doi: 10.1074/jbc.M806337200
Mafakheri, A., Siosemardeh, A., Bahramnejad, B., Struik, P. C., & Sohrabi, Y. (2011). Effect of drought stress and subsequent recovery on protein, carbohydrate contents, catalase and peroxidase activities in three chickpea ('Cicer arietinum') cultivars. Australian Journal of Crop Science, 5(10), 1255-1260. doi: 10.3316/informit.746357591676684.
Manetti, J., Fº., Oliveira, C. M. G., Caramori, P. H., Nagashima, G. T., & Hernandez, F. B. T. (2018). Cold tolerance of forage plant species. Semina: Ciências Agrárias, 39(4), 1469-1476. doi: 10.5433/1679-035 9.2018v39n4p1469
Marín de la Rosa, N., Lin, C. W., Kang, Y. J., Dhondt, S., Gonzalez, N., Inzé, D., & Falter Braun, P. (2019). Drought resistance is mediated by divergent strategies in closely related Brassicaceae. New Phytologist, 223(2), 783-797. doi: 10.1111/nph.15841
Meena, Y. K., & Kaur, N. (2019). Towards an understanding of physiological and biochemical mechanisms of drought tolerance in plant. Annual Research & Review in Biology, 31(2), 1-13. doi: 10.9734/ARRB/ 2019/v31i230042
Nemati, M., Piro, A., Norouzi, M., Vahed, M. M., Nisticò, D. M., & Mazzuca, S. (2019). Comparative physiological and leaf proteomic analyses revealed the tolerant and sensitive traits to drought stress in two wheat parental lines and their F6 progenies. Environmental and Experimental Botany, 158, 223-237. doi: 10.1016/j.envexpbot.2018.10.024
Nunes, F. H., Jr., Freitas, V. S., Mesquita, R. O., Braga, B. B., Barbosa, R. M., Martins, K., & Gondim, F. A. (2017). Effects of supplement with sanitary landfill leachate in gas exchange of sunflower (Helianthus annuus L.) seedlings under drought stress. Environmental Science and Pollution Research, 24(30), 24002-24010. doi: 10.1007/s11356-017-0047-6
Nxele, X., Klein, A., & Ndimba, B. K. (2017). Drought and salinity stress alters ROS accumulation, water retention, and osmolyte content in sorghum plants. South African Journal of Botany, 108, 261-266. doi: 10.1016/j.sajb.2016.11.003
Ozturk, M., Turkyilmaz Unal, B., García‐Caparrós, P., Khursheed, A., Gul, A., & Hasanuzzaman, M. (2020). Osmoregulation and its actions during the drought stress in plants. Physiologia Plantarum, Special Issue Article, 1-15. doi: 10.1111/ppl.13297
Peixoto, P. H. P., Cambraia, J., Sant’Anna, R., Mosquim, P. R., & Moreira, M. A. (1999). Aluminum effects on lipid peroxidation and activities of enzymes of oxidative metabolism in sorghum. Revista Brasileira de Fisiologia Vegetal, 11(3), 137-143. Recuperado de https://www.researchgate.net/profile/ Paulo_ Peixoto4/publication/267338431_ALUMINUM_EFFECTS_ON_LIPID_PEROXIDATION_AND_ON_THE_ACTIVITIES_OF_ENZYMES_OF_OXIDATIVE_METABOLISM_IN_SORGHUM/links/544db4960cf2d6347f45cb09.pdf
Pereira, J. W. D. L., Melo, P. D. A., Fº., Albuquerque, M. B., Nogueira, R. J. M. C., & Santos, R. C. (2012). Mudanças bioquímicas em genótipos de amendoim submetidos a déficit hídrico moderado. Revista Ciência Agronômica, 43(4), 766-773. doi: 10.1590/S1806-66902012000400019
Rizhsky, L., Liang, H., Shuman, J., Shulaev, V., Davletova, S., & Mittler, R. (2004). When defense pathways collide. The response of Arabidopsis to a combination of drought and heat stress. Plant Physiology, 134(4), 1683-1696. doi: 10.1104/pp.103.033431
Sousa, C., Pedrosa, E. M., Rolim, M. M., Oliveira, R. A. D., Fº., Souza, M. A. de, & Pereira, J. V. F. (2015). Crescimento e respostas enzimáticas do feijoeiro caupi sob estresse hídrico e nematoide de galhas. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, 19(2), 113-118. doi: 10.1590/1807-1929/ agriambi.v19n2p113-118
Stringari, J. D., Sacomori, W., Roters, D. F., Oliveira, G. F. de, & Almeida, J. (2019). O efeito da aplicação continuada de dejeto líquido suíno na produção de massa seca da aveia preta. Revista Agroecossistemas, 11(2), 73-81. doi: 10.18542/ragros.v11i2.7388
Tonato, F., Carneiro, B., Pedreira, C. G. S., & Pequeno, D. N. L. (2014). Aveia preta e azevém anual colhidos por interceptação de luz ou intervalo fixo de tempo em sistemas integrados de agricultura e pecuária no Estado de São Paulo. Ciência Rural, 44(1), 104-110. doi: 10.1590/S0103-84782014000100 017
Turner, N. C. (2018). Turgor maintenance by osmotic adjustment: 40 years of progress. Journal of Experimental Botany, 69(13), 3223-3233. doi: 10.1093/jxb/ery181
Wang, Z., Li, J., Lai, C., Wang, R. Y., Chen, X., & Lian, Y. (2018). Drying tendency dominating the global grain production area. Global Food Security, 16, 138-149. doi: 10.1016/j.gfs.2018.02.001
Yang, F., & Miao, L. F. (2010). Adaptive responses to progressive drought stress in two poplar species originating from different altitudes. Silva Fennica, 44(1), 23-37. doi: 10.14214/sf.160
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Publicado
2021-07-02
Como Citar
Sartori, A. V. de S., Oliveira, C. M. G. de, & Zucareli, C. (2021). Mudanças bioquímicas em plantas de aveia preta em resposta ao déficit hídrico sob diferentes temperaturas. Semina: Ciências Agrárias, 42(5), 2685–2702. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2021v42n5p2685
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