Propagação vegetativa do lúpulo (Humulus lupulus L.): Abordagem histórica e perspectivas
DOI:
https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n3p1373Palavras-chave:
Cannabaceae Estaquia, Micropropagação.Resumo
As inflorescências femininas do lúpulo (Humulus lupulus L.) são matérias-primas importantes utilizadas na produção de cervejas, cosméticos e medicamentos. Como as plantas femininas produzem mais lupulina que as masculinas, componente de interesse comercial, a propagação vegetativa é a forma preferencial de obtenção de mudas para os cultivos comerciais. Esta pode ser realizada por macropropagação (estaquia caulinar ou rizomas) ou micropropagação. O objetivo desta revisão foi sistematizar as diferentes técnicas de propagação vegetativa do lúpulo, sem recorte temporal, a partir de buscas nas principais bases de pesquisa acadêmica: Portal de Periódicos Capes, Scielo, Scopus, Web of Science, Science Direct, Google Acadêmico e Research Gate. A maioria dos trabalhos são relacionados à micropropagação, abordando principalmente diferentes reguladores vegetais e concentrações, além de tipos de explantes e meios de cultura, estratégias para produzir plantas livres de vírus, iluminação artificial e criopreservação. Quanto à macropropagação, experimentos com estaquia caulinar são mais comuns, porém fatores precisam ser melhor avaliados tais como tamanho e origem das estacas, período de enraizamento e resposta de diferentes cultivares. O cultivo por estacas permite a produção de clones de plantas femininas e a micropropagação a produção de clones isentos de vírus, em pouco tempo e em menor espaço físico. Atualmente, a micropropagação tem sido muito aplicada à criopreservação.Métricas
Carregando Métricas ...
Referências
Adams, A. N. (1975). Elimination of viruses from the hop (Humulus lupulus) by heat therapy and meristem culture. Journal of Horticultural Science, 50(2), 151-160. doi: 10.1080/00221589.1975.11514616
Adams, B. A. N., Barbara, D. J., Morton, A., & Darby, P. (1996). The experimental transmission of hop latent viroid and its elimination by low temperature treatment and meristem culture. Annals of Applied Biology, 128(1), 37-44. doi: 10.1111/j.1744-7348.1996.tb07087.x
Alcantara-Cortes, J. S., Godoi, J. A., Cortés, J. D. A., & Mora, R. M. S. (2019). Principales reguladores hormonales y sus interacciones en el crecimiento vegetal. Nova, 17(32), 109-129. Retrieved from http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1794-24702019000200109
Almaguer, C., Schonberger, C., Gastl, M., Arendt, E. K., & Becker, T. (2014). Humulus lupulus - a story that begs to be told, a review. Journal of the Institute of Brewing, 120(4), 289-314. doi: 10.1002/jib.160
Aynalem, H., Righetti, T., & Reed, B. M. (2006). Iron formulation affects in vitro storage of hops: an image analysis. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 42(1), 405. doi: 10.1079/IVP2006798
Batista, D., Ascensão, L., Sousa, J. M., & Pais, M. S. (1999). Adventitious shoot mass production of hop (Humulus lupulus L.) var. Eroica in liquid medium from organogenic nodule cultures. Plant Science, 151(1), 47-57. doi: 10.1016/S0168-9452(99)00196-X
Batista, D., Sousa, M. J., & Pais, M. S. (1996). Plant regeneration from stem and petiole-derived callus of Humulus lupulus L. (Hop) clone Bragança and var. Brewer’s Gold. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 32(1), 37-41. Retrieved from https://www.jstor.org/stable/20064871
Behre, K. (1998). The history of beer additives in Europe - a review. Vegetation History and Archaeobotany, 8(1), 35-48. doi: 10.1007/BF02042841
Biendl, M., Forster, A., Schonberger, C., Engelhard, B., Gahr, A., Lutz, A.,… Schmidt, R. (2014). Hops: their cultivation, composition and usage. Nuremberger, Germany: Fachverlag Hans Carl.
Davis, T. D., Haissig, B. E., & Sankhla, N. (1988). Effect of shoot growth retardants and inhibitors on adventitious rooting. In T. D. Davis, B. E. Haissig, & N. Sankhla (Eds.), Adventitious root formation in cuttings. Advances in plant sciences series (pp.174-184). Portland, Ore: Dioscoride Press.
Denoma, J. S. (2000). Humulus genetic resources: hop. USDA ARS National Clonal Germplasm repository. Corvalis, Oregon, USA. USDA-ARS National Clonal Germplasm Repository. Retrieved from https:// www.ars.usda.gov/pacific-west-area/corvallis-or/national-clonal-germplasm-repository/docs/ncgr-corvallis-humulus-germplasm
Durello, R. S., Silva, L. M., & Bogusz, S., Jr. (2019). Química do lúpulo. Quimica Nova, 42(8), 900-919. doi: 10.21577/0100-4042.20170412
Fachinello, J. C., Nachtigal, J. C., & Kersten, E. (2009). Fruticultura: fundamentos e práticas. Pelotas, RS, Brazil. Livro EMBRAPA Clima Temperado.
Fagherazzi, M. M., Santos, M. F., Santos, K. V., Rufato, L., & Moreira, M. A (2018). Propagação de estacas de lúpulo sob diferentes substratos. Revista da 15. Jornada da Pós-Graduação e Pesquisa - Congrega Urcamp, 15(15), 1400-1409. Retrieved from http://revista.urcamp.tche.br/index.php/rcjpgp/article/view/ 2914/2023
Faltus, M., Bilavcik, A., Zamecnik, J., & Svoboda, P. (2007). Effect of phytohormone composition of nutrient medium on in vitro plant regeneration in hop clones with different sensitivities to indole-3-butyric acid. Advances in Horticultural Science, 21(1), 219-224. Retrieved from https://www.jstor.org/stable/42883 538
Fortes, A. M., & Pais, M. S. (2000). Organogenesis from internode-derived nodules of Humulus Lupulus var. Nugget (cannabinaceae): histological studies and changes in the starch content. American Journal of Botany, 87(7), 971-979. doi: 10.2307/2656996
George, E. F., Hall, M. A., & Klerk, G. J. D. (2008). Plant growth regulators I: introduction; auxins, their analogues and inhibitors. In: E. F. George, M. A. Hall, & G. J. D. Klerk (Eds.), Plant Propagation by Tissue Culture. (pp.175-204). Springer, Dordrecht. doi: 10.1007/978-1-4020-5005-3_5
Gomes, E. N., Machado, M. P., Miola, J., & Deschamps, C. (2018). Leaf area and intermittent misting on hop plants propagation by stem cuttings. Revista Colombiana de Ciências Hortícolas, 12(2), 508-513. doi: 10. 17584/rcch.2018v12i2.7652
Grudzinska, M., & Solarska, E. (2005). The elimination of viruses and hop latent viroid from hop (Humulus lupulus L.) in Poland. Acta Horticulturae, 668(1), 149-152. doi: 10.17660/ActaHortic.2005.668.19
Grudzinska, M., Solarska, A., Czubacka, A., Przybys, M., & Fajbus, A. (2006). Elimination of hop latent viroid from hop plants by cold treatment and meristem tip culture. Phytopathological Polish, 40(1), 21-30. Retrieved from http://www.up.poznan.pl/~ptfit1/pdf/PP40a/PP40_21-30.pdf
Guerreiro, D., & Reis, L. A. (2019). Avaliação da propagação de estacas de lúpulo (Humulus lupulus l.) submetidas à diferentes tipos de reguladores de crescimento. Anais do Enbralupulo - Encontro Nacional de Pesquisadores e Produtores de Lúpulo, Botucatu, SP, Brasil, 1.
Guimarães, J. J., Sousa, F. G. G., Sousa, R. L., Román, R. M. S., Sarnighausen, V. C. R., Dal Pai, A., & Rodrigues, S. A. (2019). Avaliação quantitativa da produção de mudas de lúpulo Cascade por estaquia e compostos orgânicos. Anais do Enbralupulo - Encontro Nacional de Pesquisadores e Produtores de Lúpulo, Botucatu, SP, Brasil, 1.
Gurriarán, M., Revill, M., & Tamés, R. (1999). Adventitious shoot regeneration in cultures of Humulus lupulus L. (hop) cvs. brewers gold and nugget. Plant Cell Reports, 18(1), 1007-1011. Retrieved from https://link. springer.com/article/10.1007/s002990050699
Hassanein, A. (2013). Fators influencing plant propagation efficiency via stem cuttings. Journal of Horticultural Science & Ornamental Plants, 5(3), 171-176. Retrieved from http://idosi.org/jhsop/5(3)13/ 4.pdf
Hinojosa, G. F. (2000). Auxinas. In L. P. B. Cid (Ed.), Introdução aos hormônios vegetais (pp. 15-54). Brasília: EMBRAPA.
Horlemann, C., Schwekendiek, A., Hohnle, M. & G. Weber (2003). Regeneration and agrobacterium-mediated transformation of hop (Humulus lupulus L.). Plant Cell Reports, 22(1), 210-217. doi: 10.1007/s00299-003-0676-8
Howard, B. H. (1965). Regeneration of the hop plant (Humulus lupulus L.) from softwood cuttings. I. the cutting and its rooting environment. Journal of Horticultural Science, 40(3), 181-191. doi: 10.1080/002 21589.1967.11514198
Howard, B. H., & Sykes, J. T. (1966). Regeneration of the hop plant (Humulus lupulus L.) from softwood cuttings., Journal of Horticultural Science, 41(2), 155-163. doi: 10.1080/00221589.1966.11514164
Liberatore, C. M., Rodolfi, M., Beghè, D., Fabri, A., Ganino, T., & Chiancone, B. (2020a). Adventitious shoot organogenesis and encapsulation technology in hop (Humulus lupulus L.). Scientia Horticulturae, 270(1), 1-8. doi: 10.1016/j.scienta.2020.109416
Liberatore, C. M., Rodolfi, M., Beghe, D., Fabri, A., Ganino, T., & Chiancone, B. (2020b). In vitro leaf-derived organogenesis and somaclonal variant detection in Humulus lupulus L. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 56(1), 865-874. doi: 10.1007/s11627-020-10088-7
Machado, M. P., Gomes, E. N., Francisco, F., Bernert, A. F., Bespalhok, J. C., Fº., & Deschamps, C. (2018). Micropropagation and establishment of Humulus lupulus L. plantlets under field conditions at Southern Brazil. Journal of Agricultural Science, 10(7), 275-281. doi: 10.5539/jas.v10n7p275
Martinez, D., Tamès, R. S., & Revilla, M. A. (1999). Cryopreservation of in vitro-grown shoot-tips of hop (Humulus lupulus L.) using encapsulation / dehydration. Plant Cell Reports, 19(1), 59-63, doi: 10.1007/ s002990050710
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497. doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Neve, R. A. (1991). Hops. London: Chapman e Hall.
Nguyen, C. D., Vu, D., Huo, H., & Pearson, B. (2020). LED Light increases leaf area and root length of Humulus lupulus (var. Tettnanger) in vitro. Apopka, FL, USA. Ifas Extension, University of Florida. Retrieved from https://edis.ifas.ufl.edu/ep583
Nisler, J., Zatloukal, M., Popa, I., Dolezal, K., Strnad, M., & Spíchal, L. (2010). Cytokinin receptor antagonists derived from 6-benzylaminopurine. Phytochemistry, 717(1), 823-830. doi: 10.1016/j.phytochem.2010. 01.018
Pasa, M. D. S., Carvalho, G. L., Schuch, M. W., Schmitz, J. D., Torchelsen, M. M., Nickel, G. K., & Camargo, S. S. (2012). Qualidade de luz e fitorreguladores na multiplicação e enraizamento in vitro da amoreira-preta 'Xavante'. Ciência Rural, 42(8), 1392-1396. doi: 10.1590/S0103-84782012000800010
Reed, B. M. (2005). In vitro storage of hop (Humulus Lupulus L.) germplasm. Acta Horticulturae, 668(1), 249-256. doi: 10.17660/ActaHortic.2005.668.32
Reed, B. M., Okut, N., Narver, L., & DeNoma, J. (2003). Cold storage and cryopreservation of hops (Humulus lupulus) shoot cultures through application of standard protocols. CryoLetters, 24(1), 389-396. Retrieved from https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14671691/
Robins, R. J., Furze, J. M., & Rhodes, M. J. C. (1985). Acid degradation by suspension culture cells of Humulus lupulus. Phytochemistry, 24(1), 709-714. doi: 10.1016/S0031-9422(00)84881-5
Roy, A. T., Leggett, G., & Koutoulis, A. (2001). Development of a shoot multiplication system for hop (Humulus lupulus L.). In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 37(1), 79-83. Retrieved from https://www.jstor.org/stable/4293422
Sallie, J. V., & Jones, O. P. (1969). The culture of shoot tips of hop (Humulus lupulus L.) to eliminate viroses. Journal of Horticultural Science, 44(3), 281-284. doi: 10.1080/00221589.1969.11514310
Santos, M. F. S. (2019). Aclimatização de microestacas de diferentes cultivares de lúpulo (Humulus lupulus L.) Micropropagadas in vitro. Anais do Simpósio Técnico-Científico da Cultura do Lúpulo e II Seminário Técnico da Aprolúpulo, Botucatu, SP, Brasil.
Schwekendiek, A., Hanson, S. T., & Crain, M. (2009). A temporary immersion system for the effective shoot regeneration of hop. Acta Horticculturae, 84(1), 149-156. doi: 10.17660/ActaHortic.2009.848.16
Skof, S., Bohanec, B., Kastelec, D., & Luthar, Z. (2007). Spontaneous induction of tetraploidy in hop using adventitious shoot regeneration method. Plant Breeding, 126(1), 416-421. doi: 10.1111/j.1439-0523.20 07.01378.x
Smykalová, I., Patzak, J., & Lipavská, H. (2001). Efficient in vitro micropropagation and regeneration of Humulus lupulus on low sugar. Biologia Plantarum, 1(1), 7-12. doi: 10.1023/A:1017901817063
Sommer, V. B., Fagherazzi, M. M., Santos, K. V. T., Fagherazzi, A. F., Muniz, A. T., Pierezan, H. C.,… Rufato, L. (2019). Aplicação de diferentes doses de Stimulate® para desenvolvimento radicular e vegetativo em mudas de lúpulo (Humulus lupulus lupulus). Anais do Enbralupulo - Encontro Nacional de pesquisadores e produtores de lúpulo, Botucatu, SP, Brasil, 1.
Sposito, M., Ismael, R., Barbosa, C. M. A., & Tagliaferro, A. (2019). A cultura do lúpulo. Piracicaba: ESALQ. (Série Produtor Rural). Retrieved from https://www.esalq.usp.br/biblioteca/content/68-cultura-do-l%C3%BApulo
Sustar-Vozlic, J., Javornik, B., & Bohanec, B. (1999). Studies of somaclonal variation in hop (Humulus lupulus L.). Phyton, Special issue: Plant Physiology, 39(3), 283-287. Retrieved from https://www.zobodat.at/pdf/ PHY_39_3_0283-0287.pdf
Svoboda, P. (1988). Hormonal regulation of the growth of isolated apical meristems of hop (Humulus lupulus L.) in vitro. Plant Production Science, 34(1), 713-716. Retrieved from https://eurekamag.com/research/ 001/609/001609292.php
Svoboda, P. (1991). Clonal propagation hops in vitro. Plant Soil and Environment, 37(1), 643-648. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/266203478_Clonal_propagation%20 _hop_in%20_vitro
Svoboda, P. (1992a). Hop callus culture. Plant Soil and Environment, 38(1), 961-965. Retrieved from https:// www.researchgate.net/publication/266478135_Hop_callus_culture
Svoboda, P. (1992b.) Hop explantate cultures. Plant Soil and Environment, 38(1), 107-112. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/264533679_Hop_explantate_cultures
Svoboda, P. (1992c). Cultivation of isolated hop tops (Humulus Lupulus L) in vitro. Rostlinna Vyroba, 38(6), 523-528. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication%20/266396281_ Cultivation_of_ isolated_%20hop_%20tips_Humulus_lupulus_L_in_vitro
Svoboda, P. (1995). The effect of some regulators on the grow th of isolated top meristems of hops (Humulus lupulus L.) in in vitro culture. Plant Soil and Environment, 41(1), 379-381. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/264234734_the_effect_of_some_regulators_on_the_grow_th_of_isolated_top_meristems_of_hops_humulus-lupulus_l_in_in-vitro_culture
Takahashi, E. K. (2002). Transferência do gene atacina A para plantas de maracujá amarelo (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Deg.) por biobalística. Tese de doutorado em Engenharia Agrícola, Universidade de São Paulo, Piracicaba, SP, Brasil.
Taniguchi, Y., Taniguchi, H., Yamada, M., Matsukura, Y., Koizumi, H., Furihata, K., & Shindo, K. (2014). Analysis of the components of hard resin in hops (Humulus lupulus L.) and structural elucidation of their transformation products formed during the brewing process. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 62(47), 11602-11612. doi: 10.1021/jf504394h
Trojak-Goluch, A., Kawka, M., & Czarnecka, D. (2015). The effects of explant source and hormone content on plant regeneration and induction of tetraploids in Humulus lupulus L.. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 51(1), 152-159. doi: 10.1007/s11627-014-9661-x
White, P. R. (1963). The cultivation of animal and plant cells. New York: Ronald Press. Retrieved from https:// science.sciencemag.org/content/141/3580/515.1
Yang, K., Chen, Y. Y., & Wang, J. C. (2019). Selection of different explants from hops and establishment of a regeneration system. Acta Prataculturae Sinica, 28(8), 209-217. doi: 10.11686/cyxb2019160
Adams, B. A. N., Barbara, D. J., Morton, A., & Darby, P. (1996). The experimental transmission of hop latent viroid and its elimination by low temperature treatment and meristem culture. Annals of Applied Biology, 128(1), 37-44. doi: 10.1111/j.1744-7348.1996.tb07087.x
Alcantara-Cortes, J. S., Godoi, J. A., Cortés, J. D. A., & Mora, R. M. S. (2019). Principales reguladores hormonales y sus interacciones en el crecimiento vegetal. Nova, 17(32), 109-129. Retrieved from http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1794-24702019000200109
Almaguer, C., Schonberger, C., Gastl, M., Arendt, E. K., & Becker, T. (2014). Humulus lupulus - a story that begs to be told, a review. Journal of the Institute of Brewing, 120(4), 289-314. doi: 10.1002/jib.160
Aynalem, H., Righetti, T., & Reed, B. M. (2006). Iron formulation affects in vitro storage of hops: an image analysis. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 42(1), 405. doi: 10.1079/IVP2006798
Batista, D., Ascensão, L., Sousa, J. M., & Pais, M. S. (1999). Adventitious shoot mass production of hop (Humulus lupulus L.) var. Eroica in liquid medium from organogenic nodule cultures. Plant Science, 151(1), 47-57. doi: 10.1016/S0168-9452(99)00196-X
Batista, D., Sousa, M. J., & Pais, M. S. (1996). Plant regeneration from stem and petiole-derived callus of Humulus lupulus L. (Hop) clone Bragança and var. Brewer’s Gold. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 32(1), 37-41. Retrieved from https://www.jstor.org/stable/20064871
Behre, K. (1998). The history of beer additives in Europe - a review. Vegetation History and Archaeobotany, 8(1), 35-48. doi: 10.1007/BF02042841
Biendl, M., Forster, A., Schonberger, C., Engelhard, B., Gahr, A., Lutz, A.,… Schmidt, R. (2014). Hops: their cultivation, composition and usage. Nuremberger, Germany: Fachverlag Hans Carl.
Davis, T. D., Haissig, B. E., & Sankhla, N. (1988). Effect of shoot growth retardants and inhibitors on adventitious rooting. In T. D. Davis, B. E. Haissig, & N. Sankhla (Eds.), Adventitious root formation in cuttings. Advances in plant sciences series (pp.174-184). Portland, Ore: Dioscoride Press.
Denoma, J. S. (2000). Humulus genetic resources: hop. USDA ARS National Clonal Germplasm repository. Corvalis, Oregon, USA. USDA-ARS National Clonal Germplasm Repository. Retrieved from https:// www.ars.usda.gov/pacific-west-area/corvallis-or/national-clonal-germplasm-repository/docs/ncgr-corvallis-humulus-germplasm
Durello, R. S., Silva, L. M., & Bogusz, S., Jr. (2019). Química do lúpulo. Quimica Nova, 42(8), 900-919. doi: 10.21577/0100-4042.20170412
Fachinello, J. C., Nachtigal, J. C., & Kersten, E. (2009). Fruticultura: fundamentos e práticas. Pelotas, RS, Brazil. Livro EMBRAPA Clima Temperado.
Fagherazzi, M. M., Santos, M. F., Santos, K. V., Rufato, L., & Moreira, M. A (2018). Propagação de estacas de lúpulo sob diferentes substratos. Revista da 15. Jornada da Pós-Graduação e Pesquisa - Congrega Urcamp, 15(15), 1400-1409. Retrieved from http://revista.urcamp.tche.br/index.php/rcjpgp/article/view/ 2914/2023
Faltus, M., Bilavcik, A., Zamecnik, J., & Svoboda, P. (2007). Effect of phytohormone composition of nutrient medium on in vitro plant regeneration in hop clones with different sensitivities to indole-3-butyric acid. Advances in Horticultural Science, 21(1), 219-224. Retrieved from https://www.jstor.org/stable/42883 538
Fortes, A. M., & Pais, M. S. (2000). Organogenesis from internode-derived nodules of Humulus Lupulus var. Nugget (cannabinaceae): histological studies and changes in the starch content. American Journal of Botany, 87(7), 971-979. doi: 10.2307/2656996
George, E. F., Hall, M. A., & Klerk, G. J. D. (2008). Plant growth regulators I: introduction; auxins, their analogues and inhibitors. In: E. F. George, M. A. Hall, & G. J. D. Klerk (Eds.), Plant Propagation by Tissue Culture. (pp.175-204). Springer, Dordrecht. doi: 10.1007/978-1-4020-5005-3_5
Gomes, E. N., Machado, M. P., Miola, J., & Deschamps, C. (2018). Leaf area and intermittent misting on hop plants propagation by stem cuttings. Revista Colombiana de Ciências Hortícolas, 12(2), 508-513. doi: 10. 17584/rcch.2018v12i2.7652
Grudzinska, M., & Solarska, E. (2005). The elimination of viruses and hop latent viroid from hop (Humulus lupulus L.) in Poland. Acta Horticulturae, 668(1), 149-152. doi: 10.17660/ActaHortic.2005.668.19
Grudzinska, M., Solarska, A., Czubacka, A., Przybys, M., & Fajbus, A. (2006). Elimination of hop latent viroid from hop plants by cold treatment and meristem tip culture. Phytopathological Polish, 40(1), 21-30. Retrieved from http://www.up.poznan.pl/~ptfit1/pdf/PP40a/PP40_21-30.pdf
Guerreiro, D., & Reis, L. A. (2019). Avaliação da propagação de estacas de lúpulo (Humulus lupulus l.) submetidas à diferentes tipos de reguladores de crescimento. Anais do Enbralupulo - Encontro Nacional de Pesquisadores e Produtores de Lúpulo, Botucatu, SP, Brasil, 1.
Guimarães, J. J., Sousa, F. G. G., Sousa, R. L., Román, R. M. S., Sarnighausen, V. C. R., Dal Pai, A., & Rodrigues, S. A. (2019). Avaliação quantitativa da produção de mudas de lúpulo Cascade por estaquia e compostos orgânicos. Anais do Enbralupulo - Encontro Nacional de Pesquisadores e Produtores de Lúpulo, Botucatu, SP, Brasil, 1.
Gurriarán, M., Revill, M., & Tamés, R. (1999). Adventitious shoot regeneration in cultures of Humulus lupulus L. (hop) cvs. brewers gold and nugget. Plant Cell Reports, 18(1), 1007-1011. Retrieved from https://link. springer.com/article/10.1007/s002990050699
Hassanein, A. (2013). Fators influencing plant propagation efficiency via stem cuttings. Journal of Horticultural Science & Ornamental Plants, 5(3), 171-176. Retrieved from http://idosi.org/jhsop/5(3)13/ 4.pdf
Hinojosa, G. F. (2000). Auxinas. In L. P. B. Cid (Ed.), Introdução aos hormônios vegetais (pp. 15-54). Brasília: EMBRAPA.
Horlemann, C., Schwekendiek, A., Hohnle, M. & G. Weber (2003). Regeneration and agrobacterium-mediated transformation of hop (Humulus lupulus L.). Plant Cell Reports, 22(1), 210-217. doi: 10.1007/s00299-003-0676-8
Howard, B. H. (1965). Regeneration of the hop plant (Humulus lupulus L.) from softwood cuttings. I. the cutting and its rooting environment. Journal of Horticultural Science, 40(3), 181-191. doi: 10.1080/002 21589.1967.11514198
Howard, B. H., & Sykes, J. T. (1966). Regeneration of the hop plant (Humulus lupulus L.) from softwood cuttings., Journal of Horticultural Science, 41(2), 155-163. doi: 10.1080/00221589.1966.11514164
Liberatore, C. M., Rodolfi, M., Beghè, D., Fabri, A., Ganino, T., & Chiancone, B. (2020a). Adventitious shoot organogenesis and encapsulation technology in hop (Humulus lupulus L.). Scientia Horticulturae, 270(1), 1-8. doi: 10.1016/j.scienta.2020.109416
Liberatore, C. M., Rodolfi, M., Beghe, D., Fabri, A., Ganino, T., & Chiancone, B. (2020b). In vitro leaf-derived organogenesis and somaclonal variant detection in Humulus lupulus L. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 56(1), 865-874. doi: 10.1007/s11627-020-10088-7
Machado, M. P., Gomes, E. N., Francisco, F., Bernert, A. F., Bespalhok, J. C., Fº., & Deschamps, C. (2018). Micropropagation and establishment of Humulus lupulus L. plantlets under field conditions at Southern Brazil. Journal of Agricultural Science, 10(7), 275-281. doi: 10.5539/jas.v10n7p275
Martinez, D., Tamès, R. S., & Revilla, M. A. (1999). Cryopreservation of in vitro-grown shoot-tips of hop (Humulus lupulus L.) using encapsulation / dehydration. Plant Cell Reports, 19(1), 59-63, doi: 10.1007/ s002990050710
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497. doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Neve, R. A. (1991). Hops. London: Chapman e Hall.
Nguyen, C. D., Vu, D., Huo, H., & Pearson, B. (2020). LED Light increases leaf area and root length of Humulus lupulus (var. Tettnanger) in vitro. Apopka, FL, USA. Ifas Extension, University of Florida. Retrieved from https://edis.ifas.ufl.edu/ep583
Nisler, J., Zatloukal, M., Popa, I., Dolezal, K., Strnad, M., & Spíchal, L. (2010). Cytokinin receptor antagonists derived from 6-benzylaminopurine. Phytochemistry, 717(1), 823-830. doi: 10.1016/j.phytochem.2010. 01.018
Pasa, M. D. S., Carvalho, G. L., Schuch, M. W., Schmitz, J. D., Torchelsen, M. M., Nickel, G. K., & Camargo, S. S. (2012). Qualidade de luz e fitorreguladores na multiplicação e enraizamento in vitro da amoreira-preta 'Xavante'. Ciência Rural, 42(8), 1392-1396. doi: 10.1590/S0103-84782012000800010
Reed, B. M. (2005). In vitro storage of hop (Humulus Lupulus L.) germplasm. Acta Horticulturae, 668(1), 249-256. doi: 10.17660/ActaHortic.2005.668.32
Reed, B. M., Okut, N., Narver, L., & DeNoma, J. (2003). Cold storage and cryopreservation of hops (Humulus lupulus) shoot cultures through application of standard protocols. CryoLetters, 24(1), 389-396. Retrieved from https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14671691/
Robins, R. J., Furze, J. M., & Rhodes, M. J. C. (1985). Acid degradation by suspension culture cells of Humulus lupulus. Phytochemistry, 24(1), 709-714. doi: 10.1016/S0031-9422(00)84881-5
Roy, A. T., Leggett, G., & Koutoulis, A. (2001). Development of a shoot multiplication system for hop (Humulus lupulus L.). In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 37(1), 79-83. Retrieved from https://www.jstor.org/stable/4293422
Sallie, J. V., & Jones, O. P. (1969). The culture of shoot tips of hop (Humulus lupulus L.) to eliminate viroses. Journal of Horticultural Science, 44(3), 281-284. doi: 10.1080/00221589.1969.11514310
Santos, M. F. S. (2019). Aclimatização de microestacas de diferentes cultivares de lúpulo (Humulus lupulus L.) Micropropagadas in vitro. Anais do Simpósio Técnico-Científico da Cultura do Lúpulo e II Seminário Técnico da Aprolúpulo, Botucatu, SP, Brasil.
Schwekendiek, A., Hanson, S. T., & Crain, M. (2009). A temporary immersion system for the effective shoot regeneration of hop. Acta Horticculturae, 84(1), 149-156. doi: 10.17660/ActaHortic.2009.848.16
Skof, S., Bohanec, B., Kastelec, D., & Luthar, Z. (2007). Spontaneous induction of tetraploidy in hop using adventitious shoot regeneration method. Plant Breeding, 126(1), 416-421. doi: 10.1111/j.1439-0523.20 07.01378.x
Smykalová, I., Patzak, J., & Lipavská, H. (2001). Efficient in vitro micropropagation and regeneration of Humulus lupulus on low sugar. Biologia Plantarum, 1(1), 7-12. doi: 10.1023/A:1017901817063
Sommer, V. B., Fagherazzi, M. M., Santos, K. V. T., Fagherazzi, A. F., Muniz, A. T., Pierezan, H. C.,… Rufato, L. (2019). Aplicação de diferentes doses de Stimulate® para desenvolvimento radicular e vegetativo em mudas de lúpulo (Humulus lupulus lupulus). Anais do Enbralupulo - Encontro Nacional de pesquisadores e produtores de lúpulo, Botucatu, SP, Brasil, 1.
Sposito, M., Ismael, R., Barbosa, C. M. A., & Tagliaferro, A. (2019). A cultura do lúpulo. Piracicaba: ESALQ. (Série Produtor Rural). Retrieved from https://www.esalq.usp.br/biblioteca/content/68-cultura-do-l%C3%BApulo
Sustar-Vozlic, J., Javornik, B., & Bohanec, B. (1999). Studies of somaclonal variation in hop (Humulus lupulus L.). Phyton, Special issue: Plant Physiology, 39(3), 283-287. Retrieved from https://www.zobodat.at/pdf/ PHY_39_3_0283-0287.pdf
Svoboda, P. (1988). Hormonal regulation of the growth of isolated apical meristems of hop (Humulus lupulus L.) in vitro. Plant Production Science, 34(1), 713-716. Retrieved from https://eurekamag.com/research/ 001/609/001609292.php
Svoboda, P. (1991). Clonal propagation hops in vitro. Plant Soil and Environment, 37(1), 643-648. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/266203478_Clonal_propagation%20 _hop_in%20_vitro
Svoboda, P. (1992a). Hop callus culture. Plant Soil and Environment, 38(1), 961-965. Retrieved from https:// www.researchgate.net/publication/266478135_Hop_callus_culture
Svoboda, P. (1992b.) Hop explantate cultures. Plant Soil and Environment, 38(1), 107-112. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/264533679_Hop_explantate_cultures
Svoboda, P. (1992c). Cultivation of isolated hop tops (Humulus Lupulus L) in vitro. Rostlinna Vyroba, 38(6), 523-528. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication%20/266396281_ Cultivation_of_ isolated_%20hop_%20tips_Humulus_lupulus_L_in_vitro
Svoboda, P. (1995). The effect of some regulators on the grow th of isolated top meristems of hops (Humulus lupulus L.) in in vitro culture. Plant Soil and Environment, 41(1), 379-381. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/264234734_the_effect_of_some_regulators_on_the_grow_th_of_isolated_top_meristems_of_hops_humulus-lupulus_l_in_in-vitro_culture
Takahashi, E. K. (2002). Transferência do gene atacina A para plantas de maracujá amarelo (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Deg.) por biobalística. Tese de doutorado em Engenharia Agrícola, Universidade de São Paulo, Piracicaba, SP, Brasil.
Taniguchi, Y., Taniguchi, H., Yamada, M., Matsukura, Y., Koizumi, H., Furihata, K., & Shindo, K. (2014). Analysis of the components of hard resin in hops (Humulus lupulus L.) and structural elucidation of their transformation products formed during the brewing process. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 62(47), 11602-11612. doi: 10.1021/jf504394h
Trojak-Goluch, A., Kawka, M., & Czarnecka, D. (2015). The effects of explant source and hormone content on plant regeneration and induction of tetraploids in Humulus lupulus L.. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 51(1), 152-159. doi: 10.1007/s11627-014-9661-x
White, P. R. (1963). The cultivation of animal and plant cells. New York: Ronald Press. Retrieved from https:// science.sciencemag.org/content/141/3580/515.1
Yang, K., Chen, Y. Y., & Wang, J. C. (2019). Selection of different explants from hops and establishment of a regeneration system. Acta Prataculturae Sinica, 28(8), 209-217. doi: 10.11686/cyxb2019160
Downloads
Publicado
2022-03-25
Como Citar
Lagos, F. S., Zuffellato-Ribas, K. C., & Deschamps, C. (2022). Propagação vegetativa do lúpulo (Humulus lupulus L.): Abordagem histórica e perspectivas. Semina: Ciências Agrárias, 43(3), 1373–1394. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n3p1373
Edição
Seção
Artigos de revisões
Licença
Copyright (c) 2022 Semina: Ciências Agrárias
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Os Direitos Autorais para artigos publicados são de direito da revista. Em virtude da aparecerem nesta revista de acesso público, os artigos são de uso gratuito, com atribuições próprias, em aplicações educacionais e não-comerciais.
A revista se reserva o direito de efetuar, nos originais, alterações de ordem normativa, ortográfica e gramatical, com vistas a manter o padrão culto da língua e a credibilidade do veículo. Respeitará, no entanto, o estilo de escrever dos autores.
Alterações, correções ou sugestões de ordem conceitual serão encaminhadas aos autores, quando necessário. Nesses casos, os artigos, depois de adequados, deverão ser submetidos a nova apreciação.
As opiniões emitidas pelos autores dos artigos são de sua exclusiva responsabilidade.
