Palavras-chave
Bezerros
Caracterização molecular
Criptosporidiose
Nested-PCR.
Caracterização molecular
Criptosporidiose
Nested-PCR.
Como Citar
Matos, L. V. S. de, Silveira Neto, L. da, Oliveira, B. C. M., Makatu, M. Y., Pierucci, J. C., Viol, M. A., … Bresciani, K. D. S. (2019). Caracterização molecular de Cryptosporidium em bezerros de assentamentos rurais da região Noroeste do estado de São Paulo, Brasil. Semina: Ciências Agrárias, 40(1), 491–496. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2019v40n1p491
Resumo
O estudo foi realizado num total de 25 propriedades localizadas nos assentamentos São José I e Salvador, situados nos municípios de Brejo Alegre e Birigui, no estado de São Paulo. Um registro de variáveis foi elaborado, incluindo dados como sexo, raça e idade dos animais. Foram colhidas 231 amostras de fezes de bovinos de um a seis meses de idade, sendo 128 fêmeas e 103 machos, 131 mestiços e 100 da raça Holandesa. Entre os 231 bovinos examinados, 17 (7,36%) foram positivos para Cryptosporidium spp. tanto pela coloração negativa de verde malaquita como pela nested-PCR. Das 17 amostras positivas, 14 apresentaram amplificação pela eletroforese em gel de agarose suficiente para fazer o sequenciamento de DNA. Essas sequências foram detectadas similaridade genética entre 99% e 100% com as seguintes espécies. Uma sequência foi semelhante com C. parvum (referência: AB513880.1), uma com C. bovis (MF074602.1), duas com C. ryanae (KT922233.1), uma com C. felis (KM977642.1) e nove foram semelhantes com C. andersoni (MF350628). O estudo caracteriza a presença do Cryptosporidium spp. em bovinos oriundos de propriedades produtoras de leite na região Noroeste do estado de São Paulo, sendo o C. andersoni a espécie mais prevalente nesses animais, principalmente em uma faixa etária diferente das descritas por diversos autores. A presença de C. parvum indica que os bezerros da região estudada devem ser considerados como uma fonte potencial de oocistos de espécies zoonóticas. Identificamos com ineditismo o C. felis em bovinos na América, o que corrobora outros estudos realizados na Polônia e Espanha e evidencia a presença de espécies de Cryptosporidium em fezes em hospedeiros não naturais.Referências
BORNAY-LLINARES, F. J.; SILVA, A. J. da; MOURA, I. N. S., MYJAC, P.; PIETKIEWICZ, H.; KRUMINIS-LOZOWSKA, W.; GRACZYK, T. K.; PIENIAZEK, N. J. Identification of Cryptosporidium felis in a cow by morphology and molecular methods. Applied and Environmental Microbiology, Washington DC, v. 65, n. 4, p. 1455-1458, 1999.
CARDONA, G. A.; BEGOÑA BAILO, A. L.; CANO, L.; FUENTES, I.; CARMENA, D. Unexpected finding of feline-specific Giardia duodenalis assemblage F and Cryptosporidium felis in asymptomatic adult cattle in Northern Spain. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 209, n. 3-4, p. 258-263, 2015.
DEL COCO, V. F.; CÓRDOBA, M. A.; BILBAO, G.; CASTRO, A. P. A.; BASUALDO, J. A.; FAYER, R.; SANTÍN, M. Cryptosporidium parvum GP60 subtypes in dairy cattle from Buenos Aires, Argentina. Research in Veterinary Science, v. 96, n. 2, p. 311-314, 2014.
DIXON, B.; PARRIGTON, L.; COOK, A.; PINTAR, K.; POLLARI, F.; KELTON, D.; FARBER, J. The potencialfor zoonotic transmission of Giardia duodenalis and Cryptosporidium sp. From beef and dairy cattle in Ontario, Canada. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 175, n. 1-2, p. 20-26, 2011.
ELLIOT, A.; MORGAN, U. M.; THOMPSOM, R. C. A. Improved staining method for detecting Cryptosporidium oocysts in stools using malachite green. Journal of General and Applied Microbiology, Setagaya-ku, v. 45, n. 6, p. 139-142, 1999.
GONG, C.; CAO, X. F.; DENG, L.; LI, W.; HUANG, X.-M.; LAN, J.-C.; XIAO, Q. C.; ZHONG, Z. J.; FENG, F.; ZHANG, Y.; WANG, W. B.; GUO, P.; WU, K. G.; PENG, G.-N. Epidemiology of Cryptosporidium infection in cattle in China: a review. Parasite, Les Ulis, v. 24, n. 1, p. 1-8, 2017.
KVAÌCÌŒ, M.; HAVRDOVAÌ, N.; HLAÌSKOVAÌ, L.; DANÌŒKOVAÌ, T.; KANDEÌŒRA, J.; JEZÌŒKOVAÌ, J.; VIÌTOVEC, J.; SAK, B.; ORTEGA, Y.; XIAO, L.; MODRYÌ, D.; CHELLADURAI; J. R.; PRANTLOVAÌ, V.; MCEVOY, J. Cryptosporidium proliferans n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae): Molecular and biological evidence of cryptic species within gastric Cryptosporidium of mammals. Plos One, San Francisco, v. 11, n. 1, p. 1-24, 2016.
LEARMONTH, J. J.; IONAS, G.; EBBETT, K. A.; KWAN, E. S. Genetic characterization and transmission cycles of Cryptosporidium species isolated from humans in New Zealand. Applied and Environmental Microbiology, Washington DC, v. 70, n. 7, p. 3973-3978, 2004.
MAKATU, M. Y; SOARES, J. A.; MATOS, L. V. S.; COELHO, W. M. D.; MANHOSO, F. F. R.; KANETO, C. N.; BRESCIANI, K. D. S. Perfil dos produtores rurais de dois assentamentos nos municípios de Brejo Alegre e Birigui, Estado de São Paulo. Veterinária e Zootecnia, Botucatu, v. 24, n. 2, 373-383, 2017.
NAKAMURA, A. A.; MEIRELES, M. V. Cryptosporidium infections in birds - a review. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, Jaboticabal, v. 24, n. 3, p. 253-267, 2015.
OUAKLI, N.; BELKHIRI, A.; LUCIO, A.; KÖSTER, P. C.; DJOUDI, M.; DADDA, A.; KHELEF, D.; KAIDI, R.; CARMENA, D. Cryptosporidium-associated diarrhoea in neonatal calves in Algeria. Veterinary Parasitology: Regional Studies and Reports, Geneva, v. 12, p. 78-84, 2018.
PAZ E SILVA, F. M.; LOPES, R. S.; ARAUJO, J. R.; HIGH, J. P. Identification of Cryptosporidium species and genotypes in dairy cattle in Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, Jaboticabal, v. 22, n. 1, p. 22-28, 2013.
SANTÍN, M.; TROUT, J. M. Cryptosporidiosis of livestock. In: FAYER, R., XIAO, L. (Ed.). Cryptosporidium and Cryptosporidiosis. Boca Raton: FL CRC Press, 2008. p. 451-483, v. 2.
SANTÍN, M.; TROUT, J. B. M.; XIAO, L.; ZHOU, L.; GREINER, E.; FAYER, R. Prevalence and age-related variation of Cryptosporidium species and genotypes in dairy calves. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 122, n. 2, p. 103-117, 2004.
SOPWITH, W.; OSBORN, K.; CHALMERS, R.; REGAN, M. The changing epidemiology of cryptosporidiosis in North West England. Epidemiology and Infection, Cambridge, v. 133, n. 5, p. 785-793, 2005.
THOMPSON, J. D.; GIBSON, T. J.; PLEWNIAK, F.; JEANMOUGIN, F.; HIGGINS, D. G. The CLUSTALX windows interface: flexible strategies for multiple sequence alignment aided by quality analysis tools. Nucleic Acids Research, Oxford, v. 25, n. 24, p. 4876-4882, 1997.
WANG, L.; XUE, X.; LI, J.; ZHOU, Q.; YU, Y.; DU, A. Cryptosporidiosis in broiler chickens in Zhejiang Province, China: molecular characterization of oocysts detected in fecal samples. Parasite, Les Ulis, v. 21, n. 36, p. 1-5, 2014.
WEGAYEHU T.; KARIM, R.; ANBERBER, M.; ADAMU, H.; ERKO, B.; ZHANG, L.; TILAHUN, G. Prevalence and genetic characterization of Cryptosporidium species in dairy calves in Central Ethiopia. Plos One, San Francisco, v. 11, n. 5, p. 1-11, 2016.
XIAO, L. Molecular epidemiology of cryptosporidiosis: an update. Experimental Parasitology, v. 124, n. 1, p. 80-89, 2010.
XIAO, L.; LIMOR, J.; MORGAN, U. M.; SULAIMAN, I. M.; THOMPSON, R. C. A.; LAL, A. A. Sequence differences in the diagnostic target region of the oocyst wall protein gene of Cryptosporidium parasites. Applied and Environmental Microbiology, Washington DC, v. 66, n. 12, p. 5499-5502, 2000.
CARDONA, G. A.; BEGOÑA BAILO, A. L.; CANO, L.; FUENTES, I.; CARMENA, D. Unexpected finding of feline-specific Giardia duodenalis assemblage F and Cryptosporidium felis in asymptomatic adult cattle in Northern Spain. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 209, n. 3-4, p. 258-263, 2015.
DEL COCO, V. F.; CÓRDOBA, M. A.; BILBAO, G.; CASTRO, A. P. A.; BASUALDO, J. A.; FAYER, R.; SANTÍN, M. Cryptosporidium parvum GP60 subtypes in dairy cattle from Buenos Aires, Argentina. Research in Veterinary Science, v. 96, n. 2, p. 311-314, 2014.
DIXON, B.; PARRIGTON, L.; COOK, A.; PINTAR, K.; POLLARI, F.; KELTON, D.; FARBER, J. The potencialfor zoonotic transmission of Giardia duodenalis and Cryptosporidium sp. From beef and dairy cattle in Ontario, Canada. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 175, n. 1-2, p. 20-26, 2011.
ELLIOT, A.; MORGAN, U. M.; THOMPSOM, R. C. A. Improved staining method for detecting Cryptosporidium oocysts in stools using malachite green. Journal of General and Applied Microbiology, Setagaya-ku, v. 45, n. 6, p. 139-142, 1999.
GONG, C.; CAO, X. F.; DENG, L.; LI, W.; HUANG, X.-M.; LAN, J.-C.; XIAO, Q. C.; ZHONG, Z. J.; FENG, F.; ZHANG, Y.; WANG, W. B.; GUO, P.; WU, K. G.; PENG, G.-N. Epidemiology of Cryptosporidium infection in cattle in China: a review. Parasite, Les Ulis, v. 24, n. 1, p. 1-8, 2017.
KVAÌCÌŒ, M.; HAVRDOVAÌ, N.; HLAÌSKOVAÌ, L.; DANÌŒKOVAÌ, T.; KANDEÌŒRA, J.; JEZÌŒKOVAÌ, J.; VIÌTOVEC, J.; SAK, B.; ORTEGA, Y.; XIAO, L.; MODRYÌ, D.; CHELLADURAI; J. R.; PRANTLOVAÌ, V.; MCEVOY, J. Cryptosporidium proliferans n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae): Molecular and biological evidence of cryptic species within gastric Cryptosporidium of mammals. Plos One, San Francisco, v. 11, n. 1, p. 1-24, 2016.
LEARMONTH, J. J.; IONAS, G.; EBBETT, K. A.; KWAN, E. S. Genetic characterization and transmission cycles of Cryptosporidium species isolated from humans in New Zealand. Applied and Environmental Microbiology, Washington DC, v. 70, n. 7, p. 3973-3978, 2004.
MAKATU, M. Y; SOARES, J. A.; MATOS, L. V. S.; COELHO, W. M. D.; MANHOSO, F. F. R.; KANETO, C. N.; BRESCIANI, K. D. S. Perfil dos produtores rurais de dois assentamentos nos municípios de Brejo Alegre e Birigui, Estado de São Paulo. Veterinária e Zootecnia, Botucatu, v. 24, n. 2, 373-383, 2017.
NAKAMURA, A. A.; MEIRELES, M. V. Cryptosporidium infections in birds - a review. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, Jaboticabal, v. 24, n. 3, p. 253-267, 2015.
OUAKLI, N.; BELKHIRI, A.; LUCIO, A.; KÖSTER, P. C.; DJOUDI, M.; DADDA, A.; KHELEF, D.; KAIDI, R.; CARMENA, D. Cryptosporidium-associated diarrhoea in neonatal calves in Algeria. Veterinary Parasitology: Regional Studies and Reports, Geneva, v. 12, p. 78-84, 2018.
PAZ E SILVA, F. M.; LOPES, R. S.; ARAUJO, J. R.; HIGH, J. P. Identification of Cryptosporidium species and genotypes in dairy cattle in Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, Jaboticabal, v. 22, n. 1, p. 22-28, 2013.
SANTÍN, M.; TROUT, J. M. Cryptosporidiosis of livestock. In: FAYER, R., XIAO, L. (Ed.). Cryptosporidium and Cryptosporidiosis. Boca Raton: FL CRC Press, 2008. p. 451-483, v. 2.
SANTÍN, M.; TROUT, J. B. M.; XIAO, L.; ZHOU, L.; GREINER, E.; FAYER, R. Prevalence and age-related variation of Cryptosporidium species and genotypes in dairy calves. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 122, n. 2, p. 103-117, 2004.
SOPWITH, W.; OSBORN, K.; CHALMERS, R.; REGAN, M. The changing epidemiology of cryptosporidiosis in North West England. Epidemiology and Infection, Cambridge, v. 133, n. 5, p. 785-793, 2005.
THOMPSON, J. D.; GIBSON, T. J.; PLEWNIAK, F.; JEANMOUGIN, F.; HIGGINS, D. G. The CLUSTALX windows interface: flexible strategies for multiple sequence alignment aided by quality analysis tools. Nucleic Acids Research, Oxford, v. 25, n. 24, p. 4876-4882, 1997.
WANG, L.; XUE, X.; LI, J.; ZHOU, Q.; YU, Y.; DU, A. Cryptosporidiosis in broiler chickens in Zhejiang Province, China: molecular characterization of oocysts detected in fecal samples. Parasite, Les Ulis, v. 21, n. 36, p. 1-5, 2014.
WEGAYEHU T.; KARIM, R.; ANBERBER, M.; ADAMU, H.; ERKO, B.; ZHANG, L.; TILAHUN, G. Prevalence and genetic characterization of Cryptosporidium species in dairy calves in Central Ethiopia. Plos One, San Francisco, v. 11, n. 5, p. 1-11, 2016.
XIAO, L. Molecular epidemiology of cryptosporidiosis: an update. Experimental Parasitology, v. 124, n. 1, p. 80-89, 2010.
XIAO, L.; LIMOR, J.; MORGAN, U. M.; SULAIMAN, I. M.; THOMPSON, R. C. A.; LAL, A. A. Sequence differences in the diagnostic target region of the oocyst wall protein gene of Cryptosporidium parasites. Applied and Environmental Microbiology, Washington DC, v. 66, n. 12, p. 5499-5502, 2000.
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Copyright (c) 2019 Semina: Ciências Agrárias
Downloads
Não há dados estatísticos.