Palavras-chave
Infecção
Leishmaniose visceral.
Como Citar
Resumo
A leishmaniose visceral (LV) encontra-se em expansão no território brasileiro. O cão é considerado um importante reservatório urbano, no entanto, estudos tem demonstrado a presença de felinos infectados em alguns estados brasileiros. Este relato objetivou descrever um caso de infecção por Leishmania (Leishmania) infantum em um felino doméstico de dois meses proveniente de uma região brasileira com alta incidência de leishmaniose visceral humana. As amostras analisadas foram sangue, conjuntiva, baço, fígado, linfonodos poplíteo, submandibular e mesentérico, pele, pulmão e rim. Os métodos de diagnóstico utilizados foram: o exame parasitológico direto, a reação em cadeia pela polimerase (PCR) e a reação de imunofluorescência indireta (RIFI). Houve positividade de todos os tecidos e o animal apresentou elevada carga parasitária. O título obtido na RIFI foi de 1:160. O animal foi negativo para os vírus da imunodeficiência felina (FIV) e da leucemia felina (FeLV). Este trabalho aborda o primeiro caso de leishmaniose felina no estado do Tocantins e revela dados que podem contribuir para o conhecimento da doença, visto que esta mostrou-se capaz de se desenvolver de forma rápida e fatal em filhotes, podendo infectar vários tecidos.Referências
BRASIL. Coeficiente de incidência de Leishmaniose Visceral, por 100.000 habitantes. Brasil, Grandes Regiões e Unidades Federadas. 1990 a 2015. Brasília: Brasil, 2017. Disponível em: http://portalarquivos. saude.gov.br/images/pdf/2016/novembro/08/LV-Coeficiente%20de%20Incidncia.pdf. Acesso em: 1 abr. 2017.
CHATZIS, M. K.; ANDREADOU, M.; LEONTIDES, L.; KASABALIS, D.; MYLONAKIS, M.; KOUTINAS, A. F.; RALLIS, T.; IKONOMOPOULOS, J.; SARIDOMICHELAKIS, M. N. Cytological and molecular detection of Leishmania infantum in different tissues of clinically normal and sick cats. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 28, n. 202, p. 217-225, 2014. DOI: 10.1016/j.vetpar.2014.02.044
CORTES, S.; ROLÃO, N.; RAMADA, J.; CAMPINO, L. PCR as a rapid and sensitive tool in the diagnosis of human and canine leishmaniasis using Leishmania donovani s.l.-specific kinetoplastid primers. Transactions of the Royal Society Tropical Medicine and Hygiene, London, v. 98, n. 1, p. 12-17, 2004. DOI: 10.1016/S0035-9203(03)00002-6
NASEREDDIN, A.; SALANT, H.; ABDEEN, Z. Feline leishmaniasis in Jerusalem: serological investigation. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 158, n. 4, p. 364-369, 2008. DOI: 10.1016/j.vetpar.2008.09.022
PASSOS, V. M. A.; FERNANDES, O.; LACERDA, P. A. F.; VOLPINI, A. A.; GONTIJO, C. M. F.; DEGRAVE, W.; ROMANHA, A. J. Leishmania (Viannia) braziliensis is the predominant species infecting patients with American cutaneous leishmaniasis in the State of Minas Gerais, Southeast Brazil. Acta Tropica, Amsterdam, v. 72, n. 3, p. 251-258, 1999. DOI: 10.1016/S0001-706X(98)00100-4
PEDRAS, M. J.; GOUVÊA VIANA, L. de; OLIVEIRA, E. J. de; RABELLO, A. Comparative evaluation of direct agglutination test, rK39 and soluble antigen ELISA and IFAT for the diagnosis of visceral leishmaniasis. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, London, v. 102, n. 2, p. 172-178, 2008. DOI: 10.1016/j.trstmh.2007.11.004
PENNISI, M. G.; CARDOSO, L.; BANETH, G.; BOURDEAU, P.; KOUTINAS, A.; MIRÓ, G.; OLIVA, G.; SOLANO-GALLEGO, L. LeishVet update and recommendations on feline leishmaniosis. Parasites & Vectors, London, v. 8, n. 1, p. 302, 2015. DOI: 10.1186/s13071-015-0909-z
REIS, A. B.; MARTINS-FILHO, O. A.; TEIXEIRA-CARVALHO, A.; CARVALHO, M. G.; MAYRINK, W.; FRANÇA-SILVA, J. C.; GIUNCHETTI, R. C.; GENARO, O.; CORRÊA-OLIVEIRA, R. Parasite density and impaired biochemical/hematological status are associated with severe clinical aspects of canine visceral leishmaniasis. Research in Veterinary Science, Oxford, v. 81, n. 1, p. 68-75, 2006. DOI: 10.1016/j.rvsc.2005.09.011
SHERRY, K.; MIRO, G.; TROTTA, M.; MIRANDA, C.; MONTOYA, A.; ESPINOSA, C.; RIBAS, F.; FURLANELLO, T.; SOLANO-GALLEGO, L. A Serological and molecular study of Leishmania infantum infection in cats from the Island of Ibiza (Spain). Vector-Borne and Zoonotic Diseases, New York, v. 11, n. 3, p. 239-245, 2011. DOI: 10.1089/vbz.2009.0251
SILVA, S. M. da; RABELO, P. F. B.; GONTIJO, N. D.; RIBEIRO, R. R.; MELO, M. N.; RIBEIRO, V. M.; MICHALICK, M. S. M. First report of infection of Lutzomyia longipalpis by Leishmania (Leishmania) infantum from a naturally infected cat of Brazil. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 174, n. 1-2, p. 150-154, 2010. DOI: 10.1016/j.vetpar.2010.08.005
SOBRINHO, L. S.; ROSSI, C. N.; VIDES, J. P.; BRAGA, E. T.; GOMES, A. A.; LIMA, V. M. de; PERRI, S. H.; GENEROSO, D.; LANGONI, H.; LEUTENEGGER, C.; BIONDO, A. W.; LAURENTI, M. D.; MARCONDES, M. Coinfection of Leishmania chagasi with Toxoplasma gondii, Feline Immunodeficiency Virus (FIV) and Feline Leukemia Virus (FeLV) in cats from an endemic area of zoonotic visceral leishmaniasis. Veterinary Parasitology, Amsterdam, v. 187, n. 1-2, p. 302-306, 2012. DOI: 10.1016/j.vetpar.2012.01.010
VOLPINI, Â. C.; PASSOS M. V.; OLIVEIRA, G. C.; ROMANHA, A. J. PCR-RFLP to identify Leishmania (Viannia) braziliensis and L. (Leishmania) amazonensis causing American cutaneous leishmaniasis. Acta Tropica, Amsterdam, v. 90, n. 1, p. 31-37, 2004. DOI: 10.1016/j.actatropica.2003.10.008.
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Copyright (c) 2019 Semina: Ciências Agrárias