Níveis de suplementação e Fontes de Selênio na Dieta de pós-larvas de Tilápia do Nilo
DOI:
https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n2p611Palavras-chave:
Desempenho, Fibra muscular, Selenometionina, Selênio levedura, Selenoproteína.Resumo
A larvicultura de peixes exerce grande influência nas fases subsequentes, onde a nutrição é um pré-requisito básico para o sucesso. Portanto, quando está em sistema de produção intensificada, promove a limitação de alguns minerais, sendo necessária a suplementação de selênio em dietas para pós-larvas. Objetivou-se avaliar níveis e fontes de selênio em dietas para pós-larvas de tilápia do Nilo, sobre o desempenho e histologia muscular. Utilizou-se 1260 pós-larvas, peso médio inicial 0,010 g, distribuídas em delineamento inteiramente casualizado, em esquema fatorial com quatro níveis de suplementação (0,6; 0,9; 1,2 e 1,5 mg/kg de Selênio) e duas fontes (Selenito de sódio e Selênio levedura), mais o controle negativo, utilizou-se 35 pós-larvas por unidade experimental. Os parâmetros físico-químicos de qualidade da água, apresentaram-se dentro do recomendado para tilápias. O consumo de ração (p < 0001) e índice hepatossomático (p < 0,05), foram afetados pela fonte utilizada. Para as demais variáveis de desempenho, não foram observados efeitos dos níveis e das fontes de selênio suplementadas. Quando comparada dieta controle as dietas contendo a fonte selenito de sódio verificou-se (p < 0,05) maiores altura final, largura final, taxa de desenvolvimento especifico e taxa de eficiência proteica. Não foram evidenciados (p > 0,05) efeitos sobre morfometria das fibras musculares nas variáveis estudadas. Conclui-se que 0,6mg de selênio na dieta, independente da fonte utilizada atendeu a necessidade do mineral para pós-larvas de tilápia do Nilo.Downloads
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Referências
Betancor, M. B., Caballero, M. J., Terova, G., Saleh, R., Atalah, E., Benitez-Santana, T.,… Izquierdo, M. (2012). Selenium inclusion decreases oxidative stress indicators and muscle injuries in sea bass larvae fed high-DHA microdiets. British Journal of Nutrition, 108(12), 2115-2128. doi: 10.1017/S0007114512000 311
Biller-Takahashi, J. D., Takahashi, L. S., Mingatto, F. E., & Urbinati, E. C. (2015). The immune system is limited by oxidative stress: dietary selenium promotes optimal antioxidative status and greatest immune defense in pacu Piaractus mesopotamicus. Fish Shellfish Immunol, 47(1), 360-367. doi: 10.1016/j.fsi. 2015.09.022
De Bock, M. F. S., Moraes, G. S. D. O., Almeida, R. G. D. S., Vieira, K. D. D. S., Santoro, K. R., Bicudo, A. J. D. A., & Molica, R. J. R. (2020). Exposure of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings to a saxitoxin producing strain of raphidiopsis (Cylindrospermopsis) raciborskii (Cyanobacterium) reduces growth performance and increases mortality rate. Environmental Toxicology and Chemistry, 39(7), 1409-1420. doi: 10.1002/etc.4728
Ferrari, J. E. C., Barros, M. M., Pezzato, L. E., Gonçalves, G. S., Hisano, H., & Kleemann, G. K. (2004). Níveis de cobre em dietas para a tilápia do Nilo, Oreochromis niloticus. Acta Scientiarum. Animal Sciences, 26(4), 429-436. doi: 10.4025/actascianimsci.v26i4.1713
Furuya, W. M. (2010). Tabelas brasileiras para nutrição das Tilápias. Toledo: GFM. Recuperado de https://docplayer.com.br/7805231-Tabelas-brasileiras-para-a-nutricao-de-tilapias.html.
Hayashi, C., Boscolo, W. R., Soares, C. M., & Meurer, F. (2002). Exigência de proteína digestível para larvas de Tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus), durante a reversão sexual. Revista Brasileira Zootecnia, 31(2), 823-828. doi: 10.1590/S1516-35982002000400003
Hung, S. W., Tu, C. Y., Wang, W. S. (2007). In vivo effects of adding singular or combined anti-oxidative vitamins and/or minerals to diets on the immune system of tilapia (Oreochromis hybrids) peripheral blood monocyte-derived, anterior kidney-derived, and spleen-derived macrophages. Veterinary Immunology and Immunopathology, 115(1-2), 87-99. doi: 10.1016/j.vetimm.2006.09.004
Jagtap, R., Maher, W., Krikowa, F., Ellwood, M. J., & Foster, S. (2016). Measurement of selenomethionine and selenocysteine in fish tissues using HPLC-ICP-MS. Microchemical Journal, 128, 248-257. doi: 10. 1016/j.microc.2016.04.021
Katarzyna, B., Taylor, R. M., Szpunar, J., Lobinski, R., & Sunde, R. A. (2020). Identification and determination of selenocysteine, selenosugar, and other selenometabolites in turkey liver. Metallomics 12(5), 758-766. doi: 10.1039/d0mt00040j
Khalil, H. S., Mansour, A. T., Goda, A. M. A., & Omar, E. A. (2019). Effect of selenium yeast supplementation on growth performance, feed utilization, lipid profile, liver and intestine histological changes, and economic benefit in meagre, Argyrosomus regius, fingerlings. Aquaculture, 25, 135-143. doi: 10.1016/j. aquaculture.2018.11.018
Kleemann, G. K. (2002). Exigência nutricional de ferro da tilápia do Nilo Oreochromis niloticus. Dissertação de Mestrado, Universidade Estadual Paulista, Botucatu, São Paulo, SP, Brasil. Retrieved from https:// bibdig.biblioteca.unesp.br
Le, K. T., & Fotedar, R. (2014). Immune responses to Vibrio anguillarum in fish, Seriola lalandi, receiving selenium supplementation. Journal World Aquaculture Society, 45(2), 138-148. doi: 10.1111/jwas.12104
Lee, S., Nambi, R. W., Won, S., Katya, K., & Bai, S. C. (2016). Dietary selenium requirement and toxicity levels in juvenile Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Aquaculture, 464, 153-158. doi: 10.1016/j. aquaculture.2016.06.027
Lin, Y. H., & Shiau, S. Y. (2005). Dietary selenium requirements of juvenile grouper, Epinephelus malabaricus. Aquaculture, 250(1-2), 356-363. doi: 10.1016/j.aquaculture.2005.03.022
Mansour, A. T.-E., Goda, A. A., Omar, E. A., Khalil, H. S., & Esteban, M. A. (2017). Dietary supplementation of organic selenium improves growth, survival, antioxidant and immune status of meagre, Argyrosomus regius, juveniles. Fish and Shellfish Immunology, 68, 516-524. doi: 10.1016/j.fsi.2017.07.060
Meurer, F., Hayashi, C., Boscolo, E. R., Schamber, C. R., & Bombardelli, R. A. (2005). Fontes proteicas suplementadas com aminoácidos e minerais para a tilápia do Nilo durante a reversão sexual. Revista Brasileira Zootecnia, 34(1), 1-6. doi: 10.1590/S1516-35982005000100001
National Research Council – NRC. (2011) Nutrient requirements of fish and shrimp (2nd rev. ed.). Washington, D.C.: National Academy Press.
Pilarczyk, B., Tomza Marciniak, A., Pilarczyk, R., Marciniak, A., Bakowska, M., & Nowakowska, E. (2019). Selenium, Se. In Mammals and Birds as Bioindicators of Trace Element Contaminations in Terrestrial Environments (pp. 301-362). Springer; Cham.
Prauchner, C. A. (2020). A importância do selênio para a agropecuária e saúde humana. Santa Maria, RS, Brasil: Fundação de Apoio a Tecnologia e Ciência-Editora UFSM.
Rathore, S. S., Murthy, H. S., Girisha, S. K., Nithin, M. S., Nasren, S., Mamun, M. A. A., & Pai, M. (2021). Supplementation of nano selenium in fish diet: impact on selenium assimilation and immune regulated selenoproteome expression in monosex Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 240, 108907. doi: 10.1016/j.cbpc.2020.108907
Rui, L. (2014). Energy metabolism in the liver. Comprehensive Physiology, 4(1), 177-197. doi: 10.1002/cphy. c130024
Santos, C. E., & Fonseca, J. (2013). Selénio: fisiopatologia clínica e nutrição. Associação Portuguesa de Nutrição Entérica e Parentérica, 7(1), 2-9.
Schram, E., Pedrero, Z., Cámara, C., Heul, J. W. V. D., & Luten, J. B. (2008). Enrichment of African catfish with functional selenium originating from garlic. Aquacultura, 39(8), 850-860. doi: 10.1111/j.1365-2109. 2008.01938.x
Schrauzer, G. N. (2001). Commentary: nutrition selenium supplements: product types, quality, and safety. Journal College of Nutrition, 20(1), 1-4. doi: 10.1080/07315724.2001.10719007
Schulter, E. P., & Vieira, J. E. R., Fº. (2018). Desenvolvimento e potencial da tilapicultura no Brasil. Revista de Economia e Agronegócio, 16(2), 177-201. doi: 10.25070/rea.v16i2.554
Sele, V., Ornsrud, R., Sloth, J., Berntssen, M. H. G., & Amlund, H. (2018). Selenium and selenium species in feeds and muscle tissue of Atlantic salmon. Jounal of Trace Flements in Medicine and Biology, 47, 124-133. doi: 10.1016/j.jtemb.2018.02.005
Silva, D. R. P. D. (2015). Adição de L-glutamina+ ácido glutâmico e L-argenina na dieta de leitões recém desmamados. Dissertação de mestrado em Produção de não ruminantes, Universidade Federal da Paraíba, campus II, Areia, PB, Brasil. Recuperado de https://repositorio.ufpb.br/jspui/handle/123456789/15865
Takahashi, L. S., Biller-Takahashi, J. D., Mansano, C. F. M., Urbinati, E. C., Gimbo, R. Y., & Saita, R. V. (2017). Saita, long-term organic selenium supplementation overcomes the trade-off 538 between immune and antioxidant systems in pacu (Piaractus mesopotamicus), Fish 539. Shellfish Immunology, 60, 311-317. doi: 10.1016/j.fsi.2016.11.060
Wang, L., Zhang, X., Wu, L., Lui, Q., Zhang, D., & Yin, J. (2018). Expression of selenoprotein genes in muscle is crucial for the growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed diets supplemented with selenium yeast. Aquaculture, 492, 82-90. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.03.054
Yamamoto, F. Y. (2011). Microminerais (Cu, Fe, Mn, Se e Zn) na nutrição de peixes, uma revisão bibliográfica. Trabalho de Conclusão de Curso Apresentado no Curso de Engenharia de Aquicultura, Centro de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Santa Catarina Florianópolis/SC – Brasil. Recuperado de http://repositorio.ufsc.br/xmlui/handle/123456789/25605
Yamashita, M., & Yamashita, Y. (2015). Selenoneine in marine organisms. In S.-K. Kim (Ed.), Springer manual of marine biotechnology (pp. 1059-1069). Berlin, Heidelberg: Springer.
Yamashita, Y., Yabu, T., & Yamashita, M. (2010) Discovering the strong antioxidant selenonein in the metabolism of selenium tuna and redox, World Journal of Biological Chemistry, 1(5), 144-150. doi: 10. 4331/wjbc.v1.i5.144
Zhan, X. A., Wang, M., Zhao, R. Q., Li, W. F., & Xu, Z. R. (2007). Effects of different selenium source on selenium distribution, loin quality and antioxidant status in finishing pigs. Animal Feed Science and Technology 132(3-4), 202-211. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2006.03.020
Zhang, H., Feng, X. B., Chan, H. M., & Larssen, T. (2014). New insights into traditional health risk assessments of mercury exposure: implications of selenium. Environmental Science & Technology, 48(2), 1206-1212. doi: 10.1021/es4051082
Biller-Takahashi, J. D., Takahashi, L. S., Mingatto, F. E., & Urbinati, E. C. (2015). The immune system is limited by oxidative stress: dietary selenium promotes optimal antioxidative status and greatest immune defense in pacu Piaractus mesopotamicus. Fish Shellfish Immunol, 47(1), 360-367. doi: 10.1016/j.fsi. 2015.09.022
De Bock, M. F. S., Moraes, G. S. D. O., Almeida, R. G. D. S., Vieira, K. D. D. S., Santoro, K. R., Bicudo, A. J. D. A., & Molica, R. J. R. (2020). Exposure of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings to a saxitoxin producing strain of raphidiopsis (Cylindrospermopsis) raciborskii (Cyanobacterium) reduces growth performance and increases mortality rate. Environmental Toxicology and Chemistry, 39(7), 1409-1420. doi: 10.1002/etc.4728
Ferrari, J. E. C., Barros, M. M., Pezzato, L. E., Gonçalves, G. S., Hisano, H., & Kleemann, G. K. (2004). Níveis de cobre em dietas para a tilápia do Nilo, Oreochromis niloticus. Acta Scientiarum. Animal Sciences, 26(4), 429-436. doi: 10.4025/actascianimsci.v26i4.1713
Furuya, W. M. (2010). Tabelas brasileiras para nutrição das Tilápias. Toledo: GFM. Recuperado de https://docplayer.com.br/7805231-Tabelas-brasileiras-para-a-nutricao-de-tilapias.html.
Hayashi, C., Boscolo, W. R., Soares, C. M., & Meurer, F. (2002). Exigência de proteína digestível para larvas de Tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus), durante a reversão sexual. Revista Brasileira Zootecnia, 31(2), 823-828. doi: 10.1590/S1516-35982002000400003
Hung, S. W., Tu, C. Y., Wang, W. S. (2007). In vivo effects of adding singular or combined anti-oxidative vitamins and/or minerals to diets on the immune system of tilapia (Oreochromis hybrids) peripheral blood monocyte-derived, anterior kidney-derived, and spleen-derived macrophages. Veterinary Immunology and Immunopathology, 115(1-2), 87-99. doi: 10.1016/j.vetimm.2006.09.004
Jagtap, R., Maher, W., Krikowa, F., Ellwood, M. J., & Foster, S. (2016). Measurement of selenomethionine and selenocysteine in fish tissues using HPLC-ICP-MS. Microchemical Journal, 128, 248-257. doi: 10. 1016/j.microc.2016.04.021
Katarzyna, B., Taylor, R. M., Szpunar, J., Lobinski, R., & Sunde, R. A. (2020). Identification and determination of selenocysteine, selenosugar, and other selenometabolites in turkey liver. Metallomics 12(5), 758-766. doi: 10.1039/d0mt00040j
Khalil, H. S., Mansour, A. T., Goda, A. M. A., & Omar, E. A. (2019). Effect of selenium yeast supplementation on growth performance, feed utilization, lipid profile, liver and intestine histological changes, and economic benefit in meagre, Argyrosomus regius, fingerlings. Aquaculture, 25, 135-143. doi: 10.1016/j. aquaculture.2018.11.018
Kleemann, G. K. (2002). Exigência nutricional de ferro da tilápia do Nilo Oreochromis niloticus. Dissertação de Mestrado, Universidade Estadual Paulista, Botucatu, São Paulo, SP, Brasil. Retrieved from https:// bibdig.biblioteca.unesp.br
Le, K. T., & Fotedar, R. (2014). Immune responses to Vibrio anguillarum in fish, Seriola lalandi, receiving selenium supplementation. Journal World Aquaculture Society, 45(2), 138-148. doi: 10.1111/jwas.12104
Lee, S., Nambi, R. W., Won, S., Katya, K., & Bai, S. C. (2016). Dietary selenium requirement and toxicity levels in juvenile Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Aquaculture, 464, 153-158. doi: 10.1016/j. aquaculture.2016.06.027
Lin, Y. H., & Shiau, S. Y. (2005). Dietary selenium requirements of juvenile grouper, Epinephelus malabaricus. Aquaculture, 250(1-2), 356-363. doi: 10.1016/j.aquaculture.2005.03.022
Mansour, A. T.-E., Goda, A. A., Omar, E. A., Khalil, H. S., & Esteban, M. A. (2017). Dietary supplementation of organic selenium improves growth, survival, antioxidant and immune status of meagre, Argyrosomus regius, juveniles. Fish and Shellfish Immunology, 68, 516-524. doi: 10.1016/j.fsi.2017.07.060
Meurer, F., Hayashi, C., Boscolo, E. R., Schamber, C. R., & Bombardelli, R. A. (2005). Fontes proteicas suplementadas com aminoácidos e minerais para a tilápia do Nilo durante a reversão sexual. Revista Brasileira Zootecnia, 34(1), 1-6. doi: 10.1590/S1516-35982005000100001
National Research Council – NRC. (2011) Nutrient requirements of fish and shrimp (2nd rev. ed.). Washington, D.C.: National Academy Press.
Pilarczyk, B., Tomza Marciniak, A., Pilarczyk, R., Marciniak, A., Bakowska, M., & Nowakowska, E. (2019). Selenium, Se. In Mammals and Birds as Bioindicators of Trace Element Contaminations in Terrestrial Environments (pp. 301-362). Springer; Cham.
Prauchner, C. A. (2020). A importância do selênio para a agropecuária e saúde humana. Santa Maria, RS, Brasil: Fundação de Apoio a Tecnologia e Ciência-Editora UFSM.
Rathore, S. S., Murthy, H. S., Girisha, S. K., Nithin, M. S., Nasren, S., Mamun, M. A. A., & Pai, M. (2021). Supplementation of nano selenium in fish diet: impact on selenium assimilation and immune regulated selenoproteome expression in monosex Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 240, 108907. doi: 10.1016/j.cbpc.2020.108907
Rui, L. (2014). Energy metabolism in the liver. Comprehensive Physiology, 4(1), 177-197. doi: 10.1002/cphy. c130024
Santos, C. E., & Fonseca, J. (2013). Selénio: fisiopatologia clínica e nutrição. Associação Portuguesa de Nutrição Entérica e Parentérica, 7(1), 2-9.
Schram, E., Pedrero, Z., Cámara, C., Heul, J. W. V. D., & Luten, J. B. (2008). Enrichment of African catfish with functional selenium originating from garlic. Aquacultura, 39(8), 850-860. doi: 10.1111/j.1365-2109. 2008.01938.x
Schrauzer, G. N. (2001). Commentary: nutrition selenium supplements: product types, quality, and safety. Journal College of Nutrition, 20(1), 1-4. doi: 10.1080/07315724.2001.10719007
Schulter, E. P., & Vieira, J. E. R., Fº. (2018). Desenvolvimento e potencial da tilapicultura no Brasil. Revista de Economia e Agronegócio, 16(2), 177-201. doi: 10.25070/rea.v16i2.554
Sele, V., Ornsrud, R., Sloth, J., Berntssen, M. H. G., & Amlund, H. (2018). Selenium and selenium species in feeds and muscle tissue of Atlantic salmon. Jounal of Trace Flements in Medicine and Biology, 47, 124-133. doi: 10.1016/j.jtemb.2018.02.005
Silva, D. R. P. D. (2015). Adição de L-glutamina+ ácido glutâmico e L-argenina na dieta de leitões recém desmamados. Dissertação de mestrado em Produção de não ruminantes, Universidade Federal da Paraíba, campus II, Areia, PB, Brasil. Recuperado de https://repositorio.ufpb.br/jspui/handle/123456789/15865
Takahashi, L. S., Biller-Takahashi, J. D., Mansano, C. F. M., Urbinati, E. C., Gimbo, R. Y., & Saita, R. V. (2017). Saita, long-term organic selenium supplementation overcomes the trade-off 538 between immune and antioxidant systems in pacu (Piaractus mesopotamicus), Fish 539. Shellfish Immunology, 60, 311-317. doi: 10.1016/j.fsi.2016.11.060
Wang, L., Zhang, X., Wu, L., Lui, Q., Zhang, D., & Yin, J. (2018). Expression of selenoprotein genes in muscle is crucial for the growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed diets supplemented with selenium yeast. Aquaculture, 492, 82-90. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.03.054
Yamamoto, F. Y. (2011). Microminerais (Cu, Fe, Mn, Se e Zn) na nutrição de peixes, uma revisão bibliográfica. Trabalho de Conclusão de Curso Apresentado no Curso de Engenharia de Aquicultura, Centro de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Santa Catarina Florianópolis/SC – Brasil. Recuperado de http://repositorio.ufsc.br/xmlui/handle/123456789/25605
Yamashita, M., & Yamashita, Y. (2015). Selenoneine in marine organisms. In S.-K. Kim (Ed.), Springer manual of marine biotechnology (pp. 1059-1069). Berlin, Heidelberg: Springer.
Yamashita, Y., Yabu, T., & Yamashita, M. (2010) Discovering the strong antioxidant selenonein in the metabolism of selenium tuna and redox, World Journal of Biological Chemistry, 1(5), 144-150. doi: 10. 4331/wjbc.v1.i5.144
Zhan, X. A., Wang, M., Zhao, R. Q., Li, W. F., & Xu, Z. R. (2007). Effects of different selenium source on selenium distribution, loin quality and antioxidant status in finishing pigs. Animal Feed Science and Technology 132(3-4), 202-211. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2006.03.020
Zhang, H., Feng, X. B., Chan, H. M., & Larssen, T. (2014). New insights into traditional health risk assessments of mercury exposure: implications of selenium. Environmental Science & Technology, 48(2), 1206-1212. doi: 10.1021/es4051082
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Publicado
2022-02-25
Como Citar
Batista, J. M. M., Pascoal, L. A. F., Silva, J. H. V. da, Gomes, V. D. S., Amâncio, A. L. de L., Guerra, R. R., … Santos, J. J. A. dos. (2022). Níveis de suplementação e Fontes de Selênio na Dieta de pós-larvas de Tilápia do Nilo. Semina: Ciências Agrárias, 43(2), 611–628. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n2p611
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