Capacidade de parasitismo de Trichogramma pretiosum Riley, 1879 e Telenomus remus Nixon, 1937 após ingestão de pesticidas biológicos

Autores

DOI:

https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n4p1441

Palavras-chave:

Controle biológico, Parasitoide de ovos, Entomopatógenos, Seletividade.

Resumo

O controle biológico aumentativo (CBA) de insetos-praga é uma alternativa ambientalmente sustentável em relação aos inseticidas sintéticos. Com a utilização do CBA, mais de um agente de controle pode ser utilizado para um mesmo inseto-praga que se encontra em diferentes estágios do seu ciclo de vida ou para pragas que ocorrem simultaneamente na área. No entanto, essa relação necessita de biossegurança para os agentes de controle envolvidos. O objetivo do trabalho foi avaliar a capacidade de parasitismo de Trichogramma pretiosum Riley, 1879 e Telenomus remus Nixon, 1937 após a ingestão de pesticidas biológicos. Os entomopatógenos Baculovírus Anticarsia gemmatalis nucleopoliedrovirus (AgMNPV), Bacillus thuringiensis var. kurstaki, Bacillus thuringiensis var. aizawai, Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae, o fungicida microbiológico Trichoderma harzianum nas concentrações recomendadas pelos fabricantes e um controle negativo (mel puro) foram utilizados nos bioensaios. A metodologia empregada foi de ingestão forçada, com os tratamentos misturados ao mel e oferecidos como alimento em duas diluições diferentes (1 parte do produto:1 parte de mel e 1 parte do produto:9 partes de mel). Cada tratamento constou de 20 fêmeas individualizadas de cada parasitoide (T. pretiosum ou T. remus). Os parâmetros avaliados foram: longevidade das fêmeas, número de ovos parasitados, viabilidade dos ovos e número de fêmeas e machos para determinação da razão sexual. Para T. pretiosum, B. bassiana (1×1013 conídios viáveis 100L H2O-1) e T. harzianum (5×1012 conídios viáveis 100L H2O-1) reduziram a longevidade das fêmeas na mistura 1:1, porém não interferiram nos demais parâmetros avaliados, bem como os demais produtos microbiológicos comerciais avaliados, quando comparados às respectivas testemunhas de ambas as diluições. Os pesticidas biológicos não influenciaram negativamente nos parâmetros avaliados de T. remus. Os produtos testados apresentam baixa toxicidade aos parasitoides de ovos T. pretiosum e T. remus. Ainda há necessidade de mais trabalhos com outros estágios de desenvolvimento dos parasitoides e outros métodos de exposição para confirmar a seletividade dos produtos aos parasitoides de ovos, para recomendar o uso conjunto destes no campo.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Biografia do Autor

Fernanda Caroline Colombo, Universidade Estadual de Londrina

Doutoranda do Programa de Pós-Graduação em Agronomia, Universidade Estadual de Londrina, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Junio Tavares Amaro, Universidade Estadual de Londrina

Dr. em Agronomia, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Rodrigo Mendes Antunes Maciel, Universidade Federal do Paraná

Doutorando do Programa de Pós-Graduação em Entomologia, Universidade Federal do Paraná, UFPR, Curitiba, Brasil.

Rafael Hayashida, Universidade Federal do Paraná

Doutorando do Programa de Pós-Graduação em Entomologia, Universidade Federal do Paraná, UFPR, Curitiba, Brasil.

Pedro Manuel Oliveira Janeiro Neves, Universidade Estadual de Londrina

Prof. Dr., Programa de Pós-Graduação em Agronomia, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Adeney de Freitas Bueno, Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária

Pesquisador, Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária, EMBRAPA/Soja, Londrina, PR, Brasil.

Referências

Abati, R., Sampaio, A. R., Maciel, R. M. A., Colombo, F. C., Libardoni, G., Battisti, L., Ricardi, E. L., Ghisi, N. de C., Costa-Maia, F. M., & Potrich, M. (2021). Bees and pesticides: the research impact and scientometrics relations. Environmental Science and Pollution Research, 28(25), 32282-32298. doi: 10.1007/s11356-021-14224-7

Alves, S. B. (1998). Controle microbiano de insetos. FEALQ.

Amaro, J. T., Bueno, A. de F., Neves, P. M. O. J., Silva, D. M. da, Pomari-Fernandes, A., & Favetti, B. M. (2018). Selectivity of different biological products to the egg parasitoid Telenomus remus (Hymenoptera: Platygastridae). Revista Brasileira de Entomologia, 62(3), 195-197. doi: 10.1016/j.rbe.2018.04.003

Amaro, J. T., Bueno, A. F., Pomari-Fernandes, A. F., & Neves, P. M. O. J. (2015). Selectivity of organic products to Trichogramma pretiosum Riley (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Neotropical Entomology, 44(5), 489-497. doi: 10.1007/s13744-015-0317-2

Aquino, M. F. de S., Sujii, E. R., Borges, M., Moraes, M. C. B., & Laumann, R. A. (2018). Diversity of stink bug adults and their parasitoids in soybean crops in Brazil: influence of a latitudinal gradient and insecticide application intensity. Environmental Entomology, 48(1), 105-113. doi: 10.1093/ee/nvy174

Araujo, E. S., Poltronieri, A. S., Poitevin, C. G., Mirás-Avalos, J. M., Zawadneak, M. A. C., & Pimentel, I. C. (2020). Compatibility between entomopathogenic fungi and EGG parasitoids (Trichogrammatidae): A laboratory study for their combined use to control Duponchelia fovealis. Insects, 11(9), 1-14. doi: 10.3390/insects11090630

Bortolotto, O. C., Pomari-Fernandes, A., Bueno, R. C. O. de F., Bueno, A. de F., Cruz, Y. K. S. da, Sanzovo, A., & Ferreira, R. B. (2015). The use of soybean integrated pest management in Brazil: a review. Agronomy Science and Biotechnology, 1(1), 25-32. doi: 10.33158/asb.2015v1i1p25

Boudh, S., & Singh, J. S. (2019). Pesticide contamination: problems and remediation strategies. In R. Bharagava, & P. Chowdary (Eds.), Emerging and eco-friendly approaches for waste management (pp. 245-269). Singapore.

Bueno, A. de F., Carvalho, G. A., Santos, A. C. dos, Sosa-Gómez, D. R., & Silva, D. M. da. (2017a). Pesticide selectivity to natural enemies: challenges and constraints for research and field recommendation. Ciência Rural, 47(6), 1-10. doi: 10.1590/0103-8478cr20160829

Bueno, A. F., Panizzi, A. R., Hunt, T. E., Dourado, P. M., Pitta, R. M., & Gonçalves, J. (2021). Challenges for adoption of Integrated Pest Management (IPM): the soybean example. Neotropical Entomology, 50(1), 5-20. doi: 10.1007/s13744-020-00792-9

Bueno, R. C. de O., Raetano, C. G., Dorneles, J. Jr., & Carvalho, F. K. (2017b). Integrated management of soybean pests: the example of Brazil. Outlooks on Pest Management, 28(5), 149-153. doi: 10.1564/v28

Bueno, R. C. O. de F., Parra, J. R. P., & Bueno, A. de F. (2012). Trichogramma pretiosum parasitism of Pseudoplusia includens and Anticarsia gemmatalis eggs at different temperatures. Biological Control, 60(2), 154-162. doi: 10.1016/j.biocontrol.2011.11.005

Burr, I. W., & Foster, L. A. (1972). A test for equality of variances. University of Purdue.

Carvalho, G. A., Moura, A. P., & Bueno, V. H. P. (2006). Side effects of pesticides on Trichogramma pretiosum (Hymenoptera: Trichogrammatidae). In C. Castañé, & J. A. Sanchez (Eds.), IOBC/WPRS Bulletin (pp. 355-359). France.

Desneux, N., Decourtye, A., & Delpuech, J. M. (2007). The sublethal effects of pesticides on beneficial arthropods. Annual Review of Entomology, 52(1), 81-106. doi: 10.1146/annurev.ento.52.110405.091440

DiBartolomeis, M., Kegley, S., Mineau, P., Radford, R., & Klein, K. (2019). An assessment of acute insecticide toxicity loading (AITL) of chemical pesticides used on agricultural land in the United States. PLoS ONE, 14(8), 1-27. doi: 10.1371/journal.pone.0220029

Feltrin-Campos, E., Rigenberg, R., Carvalho, G. A., Glaeser, D. F., & Oliveira, H. N. de. (2018). Selectivity of insecticides against adult Trichogramma pretiosum Riley (Hymenoptera: Trichogrammatidae) on Cassava. Journal of Agricultural Science, 11(1), 546. doi: 10.5539/jas.v11n1p546

Gomes, S. M. (1997). Comparação de três hospedeiros alternativos para criação e produção massal de Trichogramma pretiosum Riley, 1879 e T. galloi Zucchi, 1988. Tese de Doutorado, Universidade de São Paulo, Piracicaba, SP, Brasil.

Goulson, D. (2013). An overview of the environmental risks posed by neonicotinoid insecticides. Journal of Applied Ecology, 50(4), 977-987. doi: 10.1111/1365-2664.12111

Greene, G. L., Leppla, N. C., & Dickerson, W. A. (1976). Velvetbean caterpillar: a rearing procedure and artificial medium. Journal of Economic Entomology, 69(4), 487-488. doi: 10.1093/jee/69.4.487

Hardy, I. C. W. (1994). Sex ratio and mating structure in the parasitoid Hymenoptera. Oikos, 69(1), 3-20. doi: 10.2307/3545278

Hassan, S. A., Halsall, N., Gray, A. P., Kuehner, C., Moll, M., Bakker, F. M., Roembke, J., Yousef, A., Nasr, F., & Abdelgader, H. A. (2000). A laboratory method to evaluate the side effects of plant protection products on Trichogramma cacoeciae Marchal (Hymenoptera: Trichogrammatidae). In M. P Candolfi, S. Blümel, R. Forster, F. M. Bakker, C. Grimm, S. A. Hassan, U. Heimbach, M. A. Mead-Briggs, B. Raber, R. Schmuck, & H. Vogt (Eds.), Guidelines to evaluate side-effects of plant protection products to non-target arthropods (pp. 107-119). Gent, Belgium.

Hladik, M. L., Main, A. R., & Goulson, D. (2018). Environmental risks and challenges associated with neonicotinoid insecticides. Environmental Science and Technology, 52(6), 3329-3335. doi: 10.1021/acs. est.7b06388

Khan, M. A., & Ahmad, W. (2019). Synthetic chemical insecticides: environmental and agro contaminants. In M. A. Khan, & W. Ahmad (Eds.), Microbes for sustainable insect pest management: An eco-friendly approach (pp. 1-22). Switzerland.

Koch, R. L., Hodgson, E. W., Knodel, J. J., Varenhorst, A. J., & Potter, B. D. (2018). Management of insecticide-resistant soybean aphids in the upper midwest of the United States. Journal of Integrated Pest Management, 9(1), 1-7. doi: 10.1093/jipm/pmy014

Lacey, L. A. (Ed.). (2016). Microbial control of insect and mite pests: from theory to practice. Academic Press.

Lacey, L. A., Grzywacz, D., Shapiro-Ilan, D. I., Frutos, R., Brownbridge, M., & Goettel, M. S. (2015). Insect pathogens as biological control agents: Back to the future. Journal of Invertebrate Pathology, 132(1), 1-41. doi: 10.1016/j.jip.2015.07.009

Lima, J. A. M. de C., Labanowski, J., Bastos, M. C., Zanella, R., Prestes, O. D., Vargas, J. P. R. de, Mondamert, L., Granado, E., Tiecher, T., Zafar, M., Troian, A., Le Guet, T., & Santos, D. R. dos. (2020). “Modern agriculture” transfers many pesticides to watercourses: a case study of a representative rural catchment of southern Brazil. Environmental Science and Pollution Research, 27(10), 10581-10598. doi: 10.1007/s11 356-019-06550-8

Mannino, M. C., Huarte-Bonnet, C., Davyt-Colo, B., & Pedrini, N. (2019). Is the insect cuticle the only entry gate for fungal infection? Insights into alternative modes of action of entomopathogenic fungi. Journal of Fungi, 5(2), 1-9. doi: 10.3390/jof5020033

Mills, N. J., & Kuhlmann, U. (2000). The relationship between egg load and fecundity among Trichogramma parasitoids. Ecological Entomology, 25(3), 315-324. doi: 10.1046/j.1365-2311.2000.00260.x

Nascimento, P. T., Fadini, M. A. M., Valicente, F. H., & Ribeiro, P. E. A. (2018). Does Bacillus thuringiensis have adverse effects on the host egg location by parasitoid wasps? Revista Brasileira de Entomologia, 62(4), 260-266. doi: 10.1016/j.rbe.2018.09.006

Parra, J. (2014). Biological control in Brazil: an overview. Scientia Agricola, 71(5), 420-429. doi: 10.1590/01 03-9016-2014-0167

Parra, J. R. P., Lopes, J. R. S., Serra, H. J. P., & Sales, O., Jr. (1989). Metodologia de criação de Anagasta kuehniella (Zeller, 1879) para produção massal de Trichogramma spp. Anais da Sociedade Entomológica Brasileira, 18(2), 403-415. doi: 10.37486/0301-8059.v18i2.603

Pinto, L. M. N., & Fiuza, L. M. (2003). Distribuição de genes cry de Bacillus thuringiensis isolados de solos do Estado do Rio Grande do Sul, Brasil. Ciência Rural, 33(4), 699-702. doi: 10.1590/s0103-8478200300 0400018

Pomari, A. F., Bueno, A. D. F., Freitas Bueno, R. C. O. de, & Oliveira Menezes, A. de. (2012). Biological characteristics and thermal requirements of the biological control agent Telenomus remus (Hymenoptera: Platygastridae) reared on eggs of different species of the genus Spodoptera (Lepidoptera: Noctuidae). Annals of the Entomological Society of America, 105(1), 73-81. doi: 10.1603/AN11115

Potrich, M., Alves, L. F. A, Haas, J., Silva, E. R. L. da, Daros, A., Pietrowski, V., & Neves, P. M. O. J. (2009). Selectivity of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae to Trichogramma pretiosum Riley (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Neotropical Entomology, 38(6), 822-826. doi: 10.1590/s1519-566x 2009000600016

Potrich, M., Alves, L. F. A., Lozano, E., Roman, J. C., Pietrowski, V., & Neves, P. M. O. J. (2015). Interactions between Beauveria bassiana and Trichogramma pretiosum under laboratory conditions. Entomologia Experimentalis et Applicata, 154(3), 213-221. doi: 10.1111/eea.12272

Qu, S., & Wang, S. (2018). Interaction of entomopathogenic fungi with the host immune system. Developmental and Comparative Immunology, 83(1), 96-103. doi: 10.1016/j.dci.2018.01.010

Queiroz, A. P., Bueno, A. de F., Pomari-Fernandes, A., Grande, M. L. M., Bortolotto, O. C., & Silva, D. M. (2016). Low temperature storage of Telenomus remus (Nixon) (Hymenoptera: Platygastridae) and its factitious host Corcyra cephalonica (Stainton) (Lepidoptera: Pyralidae). Neotropical Entomology, 46(2), 182-192. doi: 10.1007/s13744-016-0442-6

Shakeri, J., & Foster, H. A. (2007). Proteolytic activity and antibiotic production by Trichoderma harzianum in relation to pathogenicity to insects. Enzyme and Microbial Technology, 40(1), 961-968. doi: 10.1016/ j.enzmictec.2006.07.041

Shapiro, S., & Wilk, M. B. (1965). An analysis of variance test for normality. Biometrika, 52(3/4), 591-611. doi: 10.2307/2333709

Silva, D. M. da, & Bueno, A. de F. (2015). Organic products selectivity for Trichogramma pretiosum (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Arquivos do Instituto Biológico, 82(1), 1-8. doi: 10.1590/1808-165 7000422013

Silva, D. M. da, Freitas Bueno, A. de, Andrade, K., Santos Stecca, C. dos, Neves, P. M. O. J., & Moscardi, F. (2016). Selectivity of organic compounds to the egg parasitoid Telenomus remus Nixon (Hymenoptera: Plastygastridae). Semina:Ciencias Agrárias, 37(1), 55-66. doi: 10.5433/1679-0359.2016v37n1p55

Song, J., Wang, X., Hou, D., Huang, H., Liu, X., Deng, F., Wang, H., Arif, B. M., Hu, Z., & Wang, M. (2016). The host specificities of baculovirus per os infectivity factors. PLoS ONE, 11(7), 1-12. doi: 10.1371/ journal.pone.0159862

Sosa-Gómez, D. R., Corrêa-Ferreira, B. S., Kraemer, B., Pasini, A., Husch, P. E., Vieira, C. E. D., Martinez, C. B. R., & Lopes, I. O. L. (2020). Prevalence, damage, management and insecticide resistance of stink bug populations (Hemiptera: Pentatomidae) in commodity crops. Agricultural and Forest Entomology, 22(2), 99-118. doi: 10.1111/afe.12366

Sosa-Gómez, D. R., & D’Alessandro, C. (2019). Hongos entomopatógenos del phylum Ascomycota. In C. C. López Lastra, & R. E. Lecuona (Eds.), Micopatología de artrópodos: hongos entomopatógenos para ser usados como bioinsumos en el control microbiano de plagas (pp. 47-78). Castelar, Buenos Aires.

Stacke, R. F., Godoy, D. N., Halberstadt, S. A., Bronzatto, E. S., Giacomelli, T., Hettwer, B. L., Guedes, J. V. C., & Bernardi, O. (2020). Inheritance of lambda-cyhalothrin resistance, fitness costs and cross-resistance to other pyrethroids in soybean looper, Chrysodeixis includens (Lepidoptera: Noctuidae). Crop Protection, 131(1), 1-8. doi: 10.1016/j.cropro.2020.105096

Stanley, J., & Preetha, G. (2016). Pesticide toxicity to non-target organisms: exposure, toxicity and risk assessment methodologies. In S. Johnson, & P. Gnanadhas (Eds.), Pesticide toxicity to non-target organisms (pp. 99-152). Dordrecht.

Stark, J. D., & Banks, J. E. (2003). Population-level effects of pesticides and other toxicants on arthropods. Annual Review of Entomology, 48(1), 505-519. doi: 10.1146/annurev.ento.48.091801.112621

Stein, C. P., & Parra, J. R. P. (1987). Uso da radiação ultra-violeta para inviabilizar ovos de Anagasta kuehniella (Zeller, 1879) visando estudos com Trichogramma spp. Anais da Sociedade Entomológica do Brasil, 16(1), 229-231. doi: 10.37486/0301-8059.v16i1.477

Takada, Y., Kawamura, S., & Tanaka, T. (2001). Effects of various insecticides on the development of the egg parasitoid Trichogramma dendrolimi (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Journal of Economic Entomology, 94(6), 1340-1343. doi: 10.1603/0022-0493-94.6.1340

Torres, J. B., & Bueno, A. de F. (2018). Conservation biological control using selective insecticides - A valuable tool for IPM. Biological Control, 126(1), 53-64. doi: 10.1016/j.biocontrol.2018.07.012

Valicente, F. H., & Tuelher, E. D. E. S. (2009). Controle Biológico da lagarta do cartucho, Spodoptera frugiperda, com Baculovírus. (Circular Técnica). EMBRAPA Milho e Sorgo.

Van Lenteren, J. C. (2012). The state of commercial augmentative biological control: plenty of natural enemies, but a frustrating lack of uptake. BioControl, 57(1), 1-20. doi: 10.1007/s10526-011-9395-1

Van Lenteren, J. C., Bolckmans, K., Köhl, J., Ravensberg, W. J., & Urbaneja, A. (2018). Biological control using invertebrates and microorganisms: plenty of new opportunities. BioControl, 63(1), 39-59. doi: 10.10 07/s10526-017-9801-4

Vianna, U. R., Pratissoli, D., Zanuncio, J. C., Lima, E. R., Brunner, J., Pereira, F. F., & Serrão, J. E. (2009). Insecticide toxicity to Trichogramma pretiosum (Hymenoptera: Trichogrammatidae) females and effect on descendant generation. Ecotoxicology, 18(2), 180-186. doi: 10.1007/s10646-008-0270-5

Xu, Y. Y., Liu, T. X., Leibee, G. L., & Jones, W. A. (2004). Effects of selected insecticides on Diadegma insulare (Hymenoptera: Ichneumonidae), a parasitoid of Plutella xylostella (Lepidoptera: Plutellidae). Biocontrol Science and Technology, 14(7), 713-723. doi: 10.1080/09583150410001682395

Downloads

Publicado

2022-04-19

Como Citar

Colombo, F. C., Amaro, J. T., Maciel, R. M. A., Hayashida, R., Neves, P. M. O. J., & Bueno, A. de F. (2022). Capacidade de parasitismo de Trichogramma pretiosum Riley, 1879 e Telenomus remus Nixon, 1937 após ingestão de pesticidas biológicos. Semina: Ciências Agrárias, 43(4), 1441–1456. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n4p1441

Edição

Seção

Artigos

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)

1 2 3 > >> 

Artigos Semelhantes

Você também pode iniciar uma pesquisa avançada por similaridade para este artigo.