Primeiro relato do vírus da necrose infecciosa do baço e do rim (ISKNV) em dois ciclídeos nativos cultivados no Brasil

Autores

DOI:

https://doi.org/10.5433/1679-0359.2024v45n1p239

Palavras-chave:

Aquicultura, Doenças em Peixes, Diagnóstico Molecular, Tucunaré, Acará, Iridovírus.

Resumo

Tucunaré (Cichla ocellaris) e acará (Geophagus brasiliensis) são ciclídeos sul-americanos muito valorizados tanto na indústria de peixes ornamentais como esportivos. Desde 2017, vários surtos do vírus da necrose infecciosa do baço e do rim (ISKNV) foram relatados em produções brasileiras de peixes de espécies alimentares e ornamentais. Neste estudo, relata-se a detecção de ISKNV em tucunarés e acarás cultivados por PCR e análise de sequência parcial do gene principal proteína do capsídeo (major capsid protein - MCP). Tucunarés (n=10) e acarás (2) moribundos provenientes de uma piscicultura com elevada mortalidade entre juvenis e adultos dessas espécies, foram submetidos ao diagnóstico bacteriológicas e molecular. Os tecidos do baço, fígado, cérebro e rim foram semeados em ágar sangue de carneiro a 5% e ágar cistina coração com 1% de glicose e hemoglobina bovina. Nenhuma bactéria foi isolada dos 12 peixes. Além disso, o DNA extraído do fígado e baço de todos os animais foram testados para ISKNV usando dois ensaios convencionais de reação em cadeia da polimerase (cPCR) e dois ensaios de nested PCR (nPCR). O DNA de ISKNV foi amplificado em todos os 12 extraídos de DNA dos peixes testados, em dois ou mais ensaios de PCR. Os amplicons de ISKNV selecionados foram confirmados pelo sequenciamento Sanger. As sequências de nucleotídeos derivadas desses animais eram idênticas às cepas de ISKNV previamente detectadas em espécies alimentares (ex. tilápias e carpas) e espécies ornamentais, incluindo cepas previamente detectadas em peixes do Brasil. Acredita-se que este é o primeiro relato de ISKNV nesses ciclídeos nativos brasileiros.

Métricas

Carregando Métricas ...

Biografia do Autor

Ulisses de Pádua Pereira, Universidade Federal de Viçosa

Prof. em Laboratório de Bacteriologia de Peixes, Departamento de Medicina Veterinária Preventiva, Universidade Estadual de Londrina, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Francisco Eduardo Pereira Rocha, Universidade Estadual de Londrina

Mestrando do Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Natália Amoroso Ferrari, Universidade Estadual de Londrina

Doutoranda do Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Leonardo Mantovani Favero, Universidade Estadual de Londrina

Doutorando do Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Raffaella Menegheti Mainardi, Universidade Estadual de Londrina

Doutoranda do Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, UEL, Londrina, PR, Brasil

Mayza Brandão da Silva, Universidade Estadual de Londrina

Mestranda do Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Amauri Alcindo Alfieri, Universidade Estadual de Londrina

Prof. Dr., Laboratório de Virologia Animal e Laboratório Multiusuário de Saúde Animal, Unidade de Biologia Molecular, Departamento de Medicina Veterinária Preventiva, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Pedro Henrique Oliveira Viadanna, University of Florida

Prof. Dr., Departamento de Doenças Infecciosas e Imunologia, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade da Flórida, Gainesville, FL 32611 EUA.

Thomas Waltzek

Prof. Dr., Departamento de Doenças Infecciosas e Imunologia, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade da Flórida, Gainesville, FL 32611 e Importação e Exportação de Animais Vivos, VS, APHIS, USDA, Gainesville, FL 32606, EUA.              

Alais Maria Dall Agnol, Universidade Estadual de Londrina

Profa. Dra., Laboratório de Bacteriologia de Peixes e Laboratório de Virologia Animal, Departamento de Medicina Veterinária Preventiva, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Referências

Azevedo, R. K. de, Abdallah, V. D., & Luque, J. L. (2006). Community ecology of metazoan parasites of the acará Geophagus brasiliensis (Quoy and Gaimard, 1824) (Perciformes: Cichlidae) from the Guandu river, State of Rio de Janeiro, Brazil. Acta Scientiarum Biological Sciences, 28(4), 403-411. DOI: https://doi.org/10.4025/actascibiolsci.v28i4.406

Azevedo, R. K. de, Abdallah, V. D., Silva, R. J. da, Azevedo, T. M. de, Martins, M. L., & Luque, J. L. (2012). Expanded description of Lamproglena monodi (Copepoda: Lernaeidae), parasitizing native and introduced fishes in Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, 21(3), 263-269. doi: 10.1590/S1984-29612012000300015 DOI: https://doi.org/10.1590/S1984-29612012000300015

Azevedo-Santos, V. M., Rigolin-SáI, O., & Pelicice, F. M. (2011). Growing, losing or introducing? Cage aquaculture as a vector for the introduction of non-native fish in Furnas Reservoir, Minas Gerais, Brazil. Neotropical Ichthyology, 9(4), e14638. doi: 10.1590/S1679-62252011000400024 DOI: https://doi.org/10.1590/S1679-62252011000400024

Békési, L., & Molnár, K. (1991). Calyptospora tucunarensis n. sp. (Apicomplexa: Sporozoea) from the liver of tucunare Cichla ocellaris in Brazil. Systematic Parasitology, 18, 127-132. doi: 10.1007/BF00017665 DOI: https://doi.org/10.1007/BF00017665

Casimiro, A. C. R., Garcia, D. A. Z., Vidotto-Magnoni, A. P., Britton, J. R., Agostinho, A. A., Almeida, F. S., & Orsi, M. L. (2018). Escapes of non-native fish from flooded aquaculture facilities: the case of Paranapanema River, southern Brazil. Zoologia, 35(e14638), 1-6. doi: 10.3897/zoologia.35.e14638 DOI: https://doi.org/10.3897/zoologia.35.e14638

Costa, A. R. da, Abreu, D. C. de, Torres Chideroli, R., Santo, K., Dib Gonçalves, D., Di Santis, G. W., & Pádua Pereira, U. (2021). Interspecies transmission of Edwardsiella ictaluri in Brazilian catfish (Pseudoplatystoma corruscans) from exotic invasive fish species. Diseases of Aquatic Organisms, 145, 197-208. doi: 10.3354/dao03610 DOI: https://doi.org/10.3354/dao03610

Dong, H. T., Nguyen, V. V., Le, H. D., Sangsuriya, P., Jitrakorn, S., Saksmerprome, V., Senapin, S., & Rodkhum, C. (2015). Naturally concurrent infections of bacterial and viral pathogens in disease outbreaks in cultured Nile tilapia (Oreochromis niloticus) farms. Aquaculture, 448(2015), 427-435. doi: 10.1016/j.aquaculture.2015.06.027 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.06.027

Efron, B., Halloran, E., & Holmes, S. (1996). Bootstrap confidence levels for phylogenetic trees. Proceedings of the National Academy of Sciences, 93(23), 13429-13429. doi: 10.1073/pnas.93.23.13429 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.93.23.13429

Figueiredo, H. C. P., Tavares, G. C., Dorella, F. A., Rosa, J. C. C., Marcelino, S. A. C., Pierezan, F., & Pereira, F. L. (2022). First report of infectious spleen and kidney necrosis virus in Nile tilapia in Brazil. Transboundary and Emerging Diseases, 69(5), 3008-3015. doi: 10.1111/tbed.14217 DOI: https://doi.org/10.1111/tbed.14217

Fonseca, A. A., Jr., Laguardia-Nascimento, M., Scotá Ferreira, A. P., Pinto, C. A., Pereira Freitas, T. R., Rivetti, A. V., Jr., Ferreira Homem, V. S., & Camargos, M. F. (2022). Detection of megalocytivirus in Oreochromis niloticus and Pseudoplatystoma corruscans in Brazil. Diseases of Aquatic Organisms, 149, 25-32. doi: 10.3354/dao03657 DOI: https://doi.org/10.3354/dao03657

Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística (2024). Pesquisas - Pecuária. https://cidades.ibge.gov.br/

International Committee on Taxonomy of Viruses (2022). Virus Taxonomy: 2022 Release. ICTV.

Januário, F. F., Gião, T., Azevedo, R. K., & Abdallah, V. D. (2019). Helminth parasites of Cichla ocellaris Bloch & Schneider, 1801 collected in the Jacaré-Pepira River, São Paulo state, Brazil. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 91(2), e20180579. doi: 10.1590/0001-3765201920180579 DOI: https://doi.org/10.1590/0001-3765201920180579

Johan, C. A. C., & Zainathan, S. C. (2020). Megalocytiviruses in ornamental fish: a review. Veterinary World, 13(11), 2565-2577. doi: 10.14202/vetworld.2020.2565-2577 DOI: https://doi.org/10.14202/vetworld.2020.2565-2577

Kimura, M. (1980). A simple method for estimating evolutionary rate of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution, 16(2), 111-120. doi: 10.1007/BF01731581 DOI: https://doi.org/10.1007/BF01731581

Kumar, S., Stecher, G., & Tamura, K. (2016). MEGA7: molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution, 33(7), 1870-1874. doi: 10.1093/molbev/msw054 DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msw054

Kurita, J., & Nakajima, K. (2012). Megalocytiviruses. Viruses, 4(4), 521-538. doi: 10.3390/v4040521 DOI: https://doi.org/10.3390/v4040521

Kurita, J., Nakajima, K., Hirono, I., & Aoki, T. (1998). Polymerase chain reaction (PCR) amplification of DNA of red sea bream iridovirus (RSIV). Fish Pathology, 33(1), 17-23. doi: 10.3147/jsfp.33.17 DOI: https://doi.org/10.3147/jsfp.33.17

Lacerda, A. C. F., Roumbedakis, K., Bereta, J. G. S., Jr., Nuñer, A. P. O., Petrucio, M. M., & Martins, M. L. (2018). Fish parasites as indicators of organic pollution in southern Brazil. Journal of Helminthology, 92(3), 322-331. doi: 10.1017/S0022149X17000414 DOI: https://doi.org/10.1017/S0022149X17000414

Lucca Maganha, S. R. de, Cardoso, P. H. M., Carvalho Balian, S. de, Almeida-Queiroz, S. R. de, Fernandes, A. M., & Sousa, R. L. M. de. (2018). Molecular detection and phylogenetic analysis of megalocytivirus in Brazilian ornamental fish. Archives of Virology, 163(8), 2225-2231. doi: 10.1007/s00705-018-3834-6 DOI: https://doi.org/10.1007/s00705-018-3834-6

Madi, R. R., & Ueta, M. T. (2009). The role of Ancyrocephalinae (Monogenea: Dactylogyridae), parasite of Geophagus brasiliensis (Pisces: Cichlidae), as an environmental indicator. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, 18(2), 38-41. doi: 10.4322/rbpv.01802008 DOI: https://doi.org/10.4322/rbpv.01802008

Pattanayak, S., Paul, A., & Sahoo, P. K. (2020). Detection and genetic analysis of infectious spleen and kidney necrosis virus (ISKNV) in ornamental fish from non-clinical cases: First report from India. BioRxiv. doi: 10.1101/2020.08.12.247650 DOI: https://doi.org/10.1101/2020.08.12.247650

Pavanelli, G. C., Simas, I. P. N., Gonçalves, J. E., & Castro, A. L. B. P. (2018). Ginger oil (Zingiber officinale) in the fight against larvae of Contracaecum sp. that cause human zoonoses. O Mundo da Saúde, São Paulo, 42(2), 534-547. doi: 10.15343/0104-7809.20184202534547 DOI: https://doi.org/10.15343/0104-7809.20184202534547

Pozza, A., Lima, F. O. C. de, Haas, M., & Lehmann, P. A. (2018). Clinostomum sp. (Digenea: Clinostomidae) and Ascocotyle sp. (Digenea: Heterophyidae): metacercariae with zoonotic potential in fishes from Tramandaí River basin, southern Brazil. Boletim do Instituto de Pesca, 44(1), 105-109. doi: 10.20950/1678-2305.2018.303 DOI: https://doi.org/10.20950/1678-2305.2018.303

Rassier, G. L., Pesenti, T. C., Pereira, J., Jr., Silva, D. S. da, Wendt, E. W., Monteiro, C. de M., & Berne, M. E. (2015). Metazoan parasites of Geophagus brasiliensis (Perciformes: Cichlidae) in Patos Lagoon, extreme south of Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, 24(4), 447-453. doi: 10.1590/S1984-29612015075 DOI: https://doi.org/10.1590/S1984-29612015075

Rimmer, A. E., Becker, J. A., Tweedie, A., & Whittington, R. J. (2012). Development of a quantitative polymerase chain reaction (qPCR) assay for the detection of dwarf gourami iridovirus (DGIV) and other megalocytiviruses and comparison with the Office International des Epizooties (OIE) reference PCR protocol. Aquaculture, 358-359, 155-163. doi: 10.1016/j.aquaculture.2012.06.034 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2012.06.034

Rocha, R. S., Pelegrini, L. S., Camargo, A. A., Abdallah, V. D., & Azevedo, R. K. de. (2015). Sphincterodiplostomum musculosum (Digenea, Diplostomidae) in Geophagus brasiliensis (Perciformes, Cichlidae) collected in a lake at Dois Córregos, São Paulo, Brazil. Ciência Rural, 45(12), 2223-2228. doi: 10.1590/0103-8478cr20141493 DOI: https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20141493

Rodrigues, R. P., Pereira, J. A., Jr., Brabo, M. F., Santos, F. J. S., Aranha, T. V., & Santos, M. A. S. (2020). Marine sport fishing in the Municipality of São Caetano de Odivelas, Pará State, Amazon, Brazil. Research, Society and Development, 9(7), e835974701. doi: 10.33448/rsd-v9i7.4701 DOI: https://doi.org/10.33448/rsd-v9i7.4701

Scholz, T., Chambrier, A. de, Prouza, A., & Royero, R. A. (1996). Redescription of Proteocephalus macrophallus, a parasite of Cichla ocellaris (Pisces: Cichlidae) from South America. Folia Parasitologica, 43(4), 287-291.

Subramaniam, K., Gotesman, M., Smith, C. E., Steckler, N. K., Kelley, K. L., Groff, J. M., & Waltzek, T. B. (2016). Megalocytivirus infection in cultured Nile tilapia Oreochromis niloticus. Diseases of Aquatic Organisms, 119(3), 253-258. doi: 10.3354/dao02985 DOI: https://doi.org/10.3354/dao02985

Swaminathan, T. R., Johny, T. K., Nithianantham, S. R., Sudhagar, A., Pradhan, P. K., Sulumane Ramachandra, K. S., Nair, R. R., & Sood, N. (2022). A natural outbreak of infectious spleen and kidney necrosis virus threatens wild pearlspot, Etroplus suratensis in Peechi Dam in the Western Ghats biodiversity hotspot, India. Transboundary and Emerging Diseases, 69(5), e1595-e1605. doi: 10.1111/tbed.14494 DOI: https://doi.org/10.1111/tbed.14494

Valladão, G. M. R., Gallani, S. U., & Pilarski, F. (2018). South American fish for continental aquaculture. Reviews in Aquaculture, 10(2), 351-369. doi: 10.1111/raq.12164 DOI: https://doi.org/10.1111/raq.12164

Downloads

Publicado

2024-02-22

Como Citar

Pereira, U. de P., Rocha, F. E. P., Ferrari, N. A., Favero, L. M., Mainardi, R. M., Silva, M. B. da, Alfieri, A. A., Viadanna, P. H. O., Waltzek, T., & Dall Agnol, A. M. (2024). Primeiro relato do vírus da necrose infecciosa do baço e do rim (ISKNV) em dois ciclídeos nativos cultivados no Brasil. Semina: Ciências Agrárias, 45(1), 239–250. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2024v45n1p239

Edição

Seção

Artigos

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)

1 2 3 4 5 > >>